¡Nuevo!
Esta revisión debería citarse como: Effa Emmanuel E, Bukirwa Hasifa. Azitromicina para el tratamiento de la fiebre tifoidea y paratifoidea (fiebre entérica) no complicada (Revisión Cochrane traducida). En: La Biblioteca Cochrane Plus, 2008 Número 4. Oxford: Update Software Ltd. Disponible en: http://www.update-software.com. (Traducida de The Cochrane Library, 2008 Issue 3. Chichester, UK: John Wiley & Sons, Ltd.).
Antecedentes La fiebre entérica (fiebre tifoidea y paratifoidea) es potencialmente mortal. La infección por cepas multirresistentes del microorganismo causal Salmonella enterica serotipo Typhi o Paratyphi aumenta la morbilidad y la mortalidad. La azitromicina puede producir mejores resultados en pacientes con formas no complicadas de la enfermedad. Objetivos Comparar la azitromicina con otros antibióticos para tratar la fiebre entérica no complicada. Estrategia de búsqueda En agosto 2008, se hicieron búsquedas en el Registro Especializado de Ensayos Controlados del Grupo Cochrane de Enfermedades Infecciosas (Cochrane Infectious Diseases Group), CENTRAL (The Cochrane Library 2008, número 3), MEDLINE, EMBASE, LILACS y mRCT. También se realizaron búsquedas en los resúmenes de congresos, en las listas de referencias, y se estableció contacto con los investigadores y con una compañía farmacéutica. Criterios de selección Ensayos controlados con asignación al azar que compararon la azitromicina con otros antibióticos para tratar a niños y adultos con fiebre entérica no complicada confirmada por cultivos de S. Typhi o Paratyphi en sangre o heces. Recopilación y análisis de datos Ambos autores, de forma independiente, extrajeron los datos y evaluaron el riesgo de sesgo. Los datos dicotómicos se presentaron y se compararon con el odds ratio, y los datos continuos se informaron como medias aritméticas con desviaciones estándar y se combinaron con la diferencia de medias (DM). Ambos se presentaron con intervalos de confianza (IC) del 95%. Resultados principales Siete ensayos con 773 participantes cumplieron los criterios de inclusión. Los ensayos utilizaron métodos adecuados para generar la secuencia de asignación y ocultar la asignación, y eran abiertos. Tres ensayos incluyeron exclusivamente adultos, dos incluyeron niños, y dos incluyeron adultos y niños; todos fueron pacientes hospitalizados. Un ensayo evaluó la azitromicina en comparación con el cloranfenicol y no demostró diferencias de ninguna medida de resultado (77 participantes, un ensayo). Cuando se comparó con las fluoroquinolonas en cuatro ensayos, la azitromicina disminuyó significativamente el fracaso clínico (OR 0,48, IC del 95%: 0,26 a 0,89; 564 participantes, cuatro ensayos) y la duración de la estancia hospitalaria (DM -1,04 días, IC del 95%: -1,73 a -0,34 días; 213 participantes, dos ensayos); los cuatro ensayos incluyeron pacientes con cepas resistentes a múltiples fármacos o al ácido nalidíxico de S. Typhi o S. Paratyphi. No se encontraron diferencias estadísticamente significativas de los otras medidas de resultado. Comparada con la ceftriaxona, la azitromicina redujo significativamente las recaídas (OR 0,09, IC del 95%: 0,01 a 0,70; 132 participantes, dos ensayos) y no otras medidas de resultado. Se informaron pocos eventos adversos, y la mayoría eran leves y desaparecían espontáneamente. Conclusiones de los autores La azitromicina parece ser mejor que las fluoroquinolonas en las poblaciones que incluyeron participantes con cepas resistentes a los fármacos. La azitromicina puede funcionar mejor que la ceftriaxona. Esta revisión debería citarse como: Effa Emmanuel E, Bukirwa Hasifa Azitromicina para el tratamiento de la fiebre tifoidea y paratifoidea (fiebre entérica) no complicada (Revisión Cochrane traducida). En: La Biblioteca Cochrane Plus, 2008 Número 4. Oxford: Update Software Ltd. Disponible en: http://www.update-software.com. (Traducida de The Cochrane Library, 2008 Issue 3. Chichester, UK: John Wiley & Sons, Ltd.).
|
|
| RESUMEN EN TÉRMINOS SENCILLOS |
|
La fiebre tifoidea y la paratifoidea (conocidas como fiebres entéricas) son enfermedades infecciosas causadas por la bacteria Salmonella. En 2000 hubo más de 25 millones de nuevos casos en todo el mundo. Las infecciones se encuentran principalmente en países de ingresos bajos y medios en los que el saneamiento y el abastecimiento de agua son deficientes.Las enfermedades son frecuentes en el subcontinente indio, sureste y extremo oriente de Asia, África, América Central y del Sur y la región mediterránea. La fiebre entérica ocurre principalmente en la población joven de entre cinco y 19 años de edad y en algunas áreas es frecuente en los niños menores de cinco años de edad. La infección se transmite generalmente por la ingestión de agua o alimentos contaminados con heces de personas con la infección.Los síntomas incluyen fiebre intermitente, cefaleas intensas, malestar abdominal, pérdida del apetito, malestar general, sensibilidad abdominal vaga y hepato o esplenomegalia.Cerca del 10% al 15% de personas presentan complicaciones, que incluyen: hemorragia, shock, e inflamación del páncreas, el músculo cardíaco y el cerebro. Durante muchos años, los antibióticos como el cloranfenicol, la ampicilina y el cotrimoxazol se usaron para tratar la fiebre entérica. Sin embargo, actualmente han aparecido cepas de bacterias resistentes a múltiples fármacos. También se usan otros antibióticos como las fluoroquinolonas, las cefalosporinas y la azitromicina. Esta revisión de ensayos consideró la azitromicina como un tratamiento para la fiebre entérica no complicada.Hubo siete ensayos (en Egipto, Vietnam y la India) que incluyeron 773 personas, todas tratadas en el hospital. Hubo pruebas limitadas que mostraron que la azitromicina era efectiva para tratar la fiebre tifoidea o paratifoidea. Lo mencionado anteriormente es especialmente importante en los casos en que hay cepas resistentes a múltiples fármacos. La azitromicina fue mejor que algunos de los otros fármacos usados.Sin embargo, es necesario tener cuidado para prevenir que las cepas también se hagan resistentes a la azitromicina. Se necesitan más ensayos amplios, preferentemente multicéntricos, y que incluyan a pacientes ambulatorios en áreas endémicas de fiebre entérica.
Definición
La fiebre entérica (fiebre tifoidea o paratifoidea) es una infección sistémica potencialmente mortal. La fiebre tifoidea es causada por la Salmonella enterica serotipo Typhi (S. Typhi) y la fiebre paratifoidea es causada por la Salmonella enterica serotipo Paratyphi (S. Paratyphi) A, B, o C. Estos microorganismos causan la enfermedad específicamente en los seres humanos. La fiebre paratifoidea es generalmente una infección menos grave con síntomas más leves y causa menos muertes (Maskalyk 2003), aunque ocasionalmente puede llegar a ser complicada (Lang 1992; Rajagopal 2002)).
Epidemiología
Se estima que a nivel mundial en el año 2000 ocurrieron 21,6 millones de nuevos casos de fiebre tifoidea con cerca de 216 510 muertes. La fiebre paratifoidea causó cerca de 5,4 millones de enfermos en el mismo año (Crump 2004)). La mayoría de los casos ocurren en países con ingresos medios y bajos, donde el saneamiento es deficiente y el abastecimiento de agua es inadecuado (Lesser 2001)). La fiebre entérica endémica es frecuente en el subcontinente indio, sureste y extremo oriente de Asia, África, América Central y del Sur y la región mediterránea (Corales 2000)). Las tasas de incidencia varían entre las áreas; por ejemplo, se informaron tasas de incidencia anual de 198 por 100 000 en la región del valle del Mekong en Vietnam (Lin 2002) y de 980 por 100 000 en Delhi, India (Sinha 1999)). En los EE.UU. la mayoría de las infecciones están vinculadas a viajes internacionales a países donde la enfermedad es endémica; se informaron 356 casos en 2003 (Hopkins 2005)).
La incidencia máxima se encuentra en personas de entre cinco y 19 años de edad, y en adultos jóvenes (Bhan 2005)). Sin embargo, en algunas áreas es frecuente en los niños menores de cinco años de edad (Sinha 1999)). Existen varios factores de riesgo para la infección como las edades extremas, la anemia de células falciformes, la falta de ácido en el jugo gástrico (como se ve en las personas de edad avanzada) y la cirugía del estómago (Parry 1984; Corales 2000)). La tasa de mortalidad es aproximadamente entre 10% y 15% si no se trata y es más alta en los niños menores de un año de edad y las personas de edad avanzada (Butler 1991; Bhutta 1996)).
Patogénesis
La infección se transmite generalmente por la ingestión de alimentos o agua contaminada con heces de personas que presentan una infección aguda, de convalescientes o que son portadores crónicos. Un portador crónico se define como alguien que excreta S. Typhi en las heces u orina durante más de un año (Bhan 2005)). La gravedad de la infección depende de la dosis infectiva inicial, la virulencia del organismo y la respuesta inmunitaria del huésped (Adams 1987)). Los organismos penetran generalmente el revestimiento intestinal desde donde se multiplican en los tejidos linfoides, se liberan en el torrente sanguíneo y luego se diseminan hacia diversos órganos, más frecuentemente el hígado, el bazo, la médula ósea y la vesícula biliar (Lesser 2001)).
Características clínicas
Las características clínicas de la fiebre entérica no complicada incluyen: fiebre intermitente progresiva, cefaleas graves, malestar abdominal, tos, pérdida del apetito, malestar general, sensibilidad abdominal vaga, hepato o esplenomegalia, y en las personas de piel blanca, manchas de color rosa en el tórax y el abdomen (Lesser 2001)). Las complicaciones pueden incluir perforación intestinal que puede requerir tratamiento quirúrgico, hemorragia intestinal que necesita transfusión de sangre, shock, pancreatitis (inflamación del páncreas), neumonía, miocarditis (inflamación del músculo cardíaco), meningitis (inflamación de las membranas de recubrimiento del cerebro) y psicosis (estado mental alterado). Ocurren en un 10% a un 15% de personas y frecuentemente en personas en que la enfermedad duró más de dos semanas (Parry 2002), y generalmente requieren ingreso hospitalario.
Diagnóstico
El diagnóstico definitivo de la fiebre entérica es el aislamiento de los microorganismos de la sangre o de la médula ósea. Los cultivos del aspirado de médula ósea son positivos en alrededor del 60% a un 90% de pacientes, y los organismos pueden cultivarse aun cuando los pacientes tomaron antibióticos durante unos días (Vallenas 1985; Akoh 1991; Gasem 1995; Corales 2000)). Las heces, la orina, las secreciones intestinales, los hisopados rectales y las muestras de piel de las manchas color rosa también pueden cultivarse, pero tienen rendimientos bajos. Las pruebas serológicas, como la reacción de aglutinación (reacción Widal), no son fiables debido a los resultados falsos positivos a causa de una reacción cruzada con otra Salmonella spp. y una sensibilidad de sólo 70% (Maskalyk 2003)). Métodos más recientes de diagnóstico como el uso de sondas de ADN y la reacción en cadena de la polimerasa para detectar la S. Typhi directamente en sangre están ahora disponibles, pero su uso en zonas endémicas es limitado (Parry 2002)).
Tratamiento y farmacorresistencia
Durante muchas décadas se usaron los antibióticos, como el cloranfenicol, la ampicilina y el cotrimoxazol, para el tratamiento de la fiebre entérica (Lesser 2001)). La aparición de cepas de Salmonella resistentes a múltiples fármacos (RMF), que son resistentes al cloranfenicol, la ampicilina, y el cotrimoxazol, han cambiado las opciones de tratamiento. Las cepas RMF de S. Typhi se han informado en todo el mundo. En Quetta, Pakistán, por ejemplo, el 69% de las S. Typhi aisladas de la sangre eran RMF (Mirza 1996), mientras en Vietnam, un 89,9% de las cepas aisladas entre 1998 y 2002 eran RMF (Le 2004)). La resistencia fue considerablemente menor en Tajikistán, donde un 27% de las cepas eran RMF (Mermin 1999)). En Sudáfrica también se informó un grupo de seis casos con tifoidea RMF (Coovadia 1992)). En Nigeria y Kenia, la tifoidea RMF se informó en un 61% (Akinyemi 2005) y 82,4% (Kariuki 2004) respectivamente. En 1995, el 28% de todas las cepas de S. Typhi aisladas de personas en los EE.UU. fueron resistentes a una amplia gama de fármacos, que incluyen la ampicilina, el cloranfenicol, la estreptomicina, las sulfonamidas y las tetraciclinas (Ribot 2002)). La incidencia de cepas RMF de S. Typhi en el Reino Unido se informó como más del 50% en 1999, por encima del 34% en 1995 y un 1,5% seis años antes (Rowe 1997; Threlfall 2001)). Sin embargo, hay informes recientes de Egipto y del subcontinente indio de una caída en la cantidad de cepas RMF de S. Typhi (Wasfy 2002; Madhulika 2004; Lakshmi 2006)).
Los antibióticos de segunda línea como las fluoroquinolonas (ciprofloxacina, ofloxacina, perfloxacina), las cefalosporinas de tercera generación (ceftriaxona, cefotaxima, cefixima) y la azitromicina, actualmente se usan frecuentemente para tratar la fiebre tifoidea RMF. (Ver Thaver 2008 una revisión Cochrane de las fluoroquinolonas para tratar la fiebre entérica.) Las infecciones con cepas sensibles al ácido nalidíxico (prototipo de las fluoroquinolonas) responden extremadamente bien a las fluoroquinolonas. Últimamente hubo varios informes de cepas resistentes a la fluoroquinolona de S. Typhi (Murdoch 1998; Asna 2003; Butt 2003)). Sin embargo, hay problemas para identificar estas cepas. S. Typhi resistente al ácido nalidíxico puede no responder a la ciprofloxacina a pesar de tener los valores de concentración inhibitoria mínima (CIM) dentro del rango actual de sensibilidad para la ciprofloxacina del Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI) (Wain 1997; Threlfall 1999; Ackers 2000)). Lo expuesto anteriormente significa que la sensibilidad in vitro no siempre puede expresar la eficacia in vivo y que hay riesgo de que el tratamiento fracase en los pacientes infectados por tales cepas (Aarestrup 2003; Crump 2003)). Las cepas resistentes al ácido nalidíxico (RaN) de S. Typhi y S. Paratyphi A son definidas como sensibles por el laboratorio de microbiología con los valores críticos actuales del Clinical and Laboratory Standards Institute; sin embargo, tienen menor sensibilidad a las fluoroquinolonas comparadas con las cepas de tipo salvaje y, además, no responden bien al tratamiento con fluoroquinolonas. Dichas características las distinguen de las cepas de S. Typhi y Paratyphi A que son totalmente resistentes a las fluoroquinolonas, por lo que el tratamiento con fluoroquinolonas siempre terminará en un fracaso. Esencialmente, hay tres categorías de sensibilidades a las fluoroquinolonas: totalmente sensible (es decir, sensible al ácido nalidíxico y a la ciprofloxacina); sensibilidad reducida (es decir, resistente al ácido nalidíxico y sensible a la ciprofloxacina); y resistente (resistente al ácido nalidíxico y a la ciprofloxacina) (Rupali 2004; Parry 2006; Kownhar 2007)).
Las cepas resistentes a las quinolonas son supuestamente RMF también (Parry 2002), y la infección con cepas resistentes de S. Typhi se asocia con una mayor morbilidad y mortalidad (Coovadia 1992)). Hay también informes provenientes del subcontinente indio de cepas que son completamente resistentes a las fluoroquinolonas y al espectro completo de las cefalosporinas (Renuka 2005; Mushtaq 2006; Joshi 2007). Estos informes apoyan la necesidad de usar antibióticos alternativos como la azitromicina para tratar la fiebre entérica farmacorresistente.
Azitromicina
La azitromicina, un miembro del grupo de antibióticos macrólidos, se ha utilizado como fármaco alternativo para tratar la fiebre tifoidea. La azitromicina logra niveles intravasculares bajos, tiene penetración intracelular alta en los tejidos, y una larga vida media de eliminación de 72 horas. Estas características hacen que se administre una vez al día y que la duración del tratamiento sea menor. El fármaco se absorbe rápidamente desde el intestino y se tolera bien cuando se usa por vía oral (Carbon 1998; Chambers 2004)). Los efectos adversos incluyen reacciones alérgicas, daño hepático, náuseas, diarrea, dolores abdominales, erupciones cutáneas y arritmias. Los estudios in vitro han mostrado que es más potente que los fármacos de primera línea tradicionales y que otros macrólidos contra la Salmonella spp. con una CIM promedio de 8 µg/ml (rango 4 a 16 µg/ml) (Metchock 1990; Butler 2001)). No hay informes de resistencia de la S. Typhi a la azitromicina y los estudios recientes han mostrado que es efectiva tanto clínica como bacteriológicamente para tratar la fiebre entérica aun en los casos ocasionados por cepas RMF (Tribble 1995; Girgis 1999)). Sin embargo, es importante señalar que actualmente no hay valores de corte ni criterios de interpretación de la zona de sensibilidad del disco generalmente aceptados para la azitromicina contra la Salmonella spp. Por lo tanto, es difícil para los laboratorios indicar categóricamente que una cepa de S. Typhi o S. Paratyphi es sensible o resistente al fármaco.
Por lo tanto, esta revisión procura evaluar las pruebas disponibles sobre la eficacia y la seguridad de la azitromicina como un fármaco alternativo para tratar la fiebre entérica no complicada.
Comparar la azitromicina con otros antibióticos para tratar la fiebre entérica no complicada.
| CRITERIOS PARA LA VALORACIÓN DE LOS ESTUDIOS DE ESTA REVISIÓN |
|
Tipos de estudios
Ensayos controlados con asignación al azar.
Tipos de participantes
Niños o adultos con fiebre entérica no complicada confirmada por el cultivo de S. Typhi o S. Paratyphi en sangre, heces, orina, o el aspirado de médula ósea. Se define la fiebre entérica no complicada como el diagnóstico clínico de fiebre tifoidea o paratifoidea sin toxemia muy alta, hemorragia intestinal, perforación intestinal, shock, psicosis o convulsiones al comienzo del tratamiento.
Tipos de intervención
Intervención
Azitromicina oral.
Control
Otros antibióticos como el cloranfenicol, la ampicilina, la amoxicilina, el cotrimoxazol, la ceftriaxona y cualquier fluoroquinolona.
Tipos de medidas de resultado
Medidas de resultado primarias
- Fracaso clínico definido como la persistencia de los síntomas o la aparición de complicaciones que requieren tratamiento prolongado o cambiar el fármaco antimicrobiano o añadir otro.
- Fracaso microbiológico definido como un cultivo positivo de la sangre, la médula ósea o las heces al final del tratamiento tal como lo definieron los autores del ensayo.
Medidas de resultado secundarias
- Tiempo de desaparición de la fiebre, definido como el tiempo en horas desde el comienzo del ensayo o el control del fármaco hasta que la temperatura corporal baje a valores menores de 38°C y que permanezca como tal durante un período según lo especificado por los autores del ensayo.
- Duración de la estancia hospitalaria, definida como el tiempo en días desde el ingreso al ensayo hasta el alta.
- Recaída, definida como la recurrencia de los síntomas además de un cultivo positivo de sangre, de médula ósea o de heces en los 30 días del período de seguimiento.
Eventos adversos
- Eventos adversos graves, definidos como los que llevan a la muerte (por ejemplo, perforación intestinal y hemorragia), a la hospitalización prolongada (por ejemplo, ictericia colestásica), y a la discapacidad.
- Eventos adversos que requerían interrupción del tratamiento (p.ej. elevación notable de las enzimas hepáticas y deterioro de la función renal).
- Otros evenvos adversos (p.ej., náuseas, vómitos y diarrea).
| ESTRATEGIA DE BÚSQUEDA PARA LA IDENTIFICACIÓN DE LOS ESTUDIOS |
|
Ver: estrategia de búsqueda Cochrane Infectious Diseases Group
Se intentó identificar todos los ensayos relevantes independientemente del idioma o del estado de la publicación (publicado, no publicado, en prensa y en curso).
Se realizaron búsquedas en las siguientes bases de datos mediante los términos de búsqueda y la estrategia descritos en la Tabla 1: Registro Especializado de Ensayos Controlados del Grupo Cochrane de Enfermedades Infecciosas (Cochrane Infectious Diseases Group) (agosto de 2008); Registro Cochrane Central de Ensayos Controlados (Cochrane Central Register of Controlled Trials, CENTRAL), publicado en The Cochrane Library (2008, número 3); MEDLINE (1966 hasta agosto 2008); EMBASE (1974 hasta agosto 2008); y LILACS (1982 hasta agosto 2008). También se buscó en el metaRegister of Controlled Trials (mRCT) en agosto 2008 utilizando 'azithromycin' and 'typhoid' como términos de búsqueda.
Table 1 Detailed search strategies
| Search set | CIDG SRa | CENTRAL | MEDLINEb | EMBASEb | LILACSb | | 1 | azithromycin | azithromycin | azithromycin | azithromycin | azithromycin | | 2 | typhoid fever* | typhoid fever* | typhoid fever* | typhoid fever* | typhoid fever* | | 3 | paratyphoid fever* | paratyphoid fever* | paratyphoid fever* | paratyphoid fever$ | paratyphoid* | | 4 | salmonell* | enteric fever | enteric fever | enteric fever | salmonell* | | 5 | 2 or 3 or 4 | TYPHOID FEVER | TYPHOID FEVER | TYPHOID FEVER | 2 or 3 or 4 | | 6 | 1 and 5 | SALMONELL* | PARATYPHOID FEVER | salmonell$ | 1 and 5 | | 7 | — | 2 or 3 or 4 or 5 or 6 | salmonell* | 2 or 3 or 4 or 5 or 6 | — | | 8 | — | 1 and 7 | 2 or 3 or 4 or 5 or 6 or 7 | 1 and 7 | — | | 9 | — | — | 1 and 8 | Limit 8 to humans | — | | 10 | — | — | Limit 9 to humans | — | — |
|
Se buscaron los resúmenes de congresos del 5th International Symposium on Typhoid Fever and other Salmonellosis, Karachi, Pakistán, del cuatro al siete de febrero de 2002 para recuperar los resúmenes pertinentes. Se contactó con expertos en este campo, Dres. Christopher Parry y Jeremy Farrar, para obtener ensayos no publicados y/o en curso. También se verificaron las listas de referencias de todos los estudios identificados mediante estos métodos.
Selección de los estudios
De forma independiente, dos autores revisaron los resultados de la búsqueda bibliográfica para seleccionar los ensayos potencialmente pertinentes. Se recuperaron los informes completos de los ensayos identificados y se determinó de forma independiente si cumplían los criterios de inclusión, con el uso de un formulario de elegibilidad probado con anterioridad. Se resolvieron los desacuerdos mediante la discusión y, en los casos en que fue necesario, mediante la consulta al editor del Grupo Cochrane de Enfermedades Infecciosas (Cochrane Infectious Diseases Group [CIDG]). Cuando no estaba claro si un ensayo era elegible, se intentó establecer contacto con sus autores para obtener información adicional. Todos los estudios excluidos y las razones de la exclusión se informaron en "Características de los estudios excluidos". Se aseguró que los ensayos con publicaciones múltiples estuvieran incluidos sólo una vez.
Extracción y manejo de los datos
Ambos autores extrajeron de forma independiente los datos con el uso de un formulario de extracción de datos probado con anterioridad, tal como se planteó en el protocolo de la revisión. Se extrajeron los datos de los resultados dicotómicos, como el fracaso clínico y el fracaso microbiológico, por el registro del número total de participantes asignados al azar que experimentaron estos resultados, y el número analizado. En los resultados continuos, como el tiempo de desaparición de la fiebre y la duración de la estancia hospitalaria, se extrajo el número total de participantes analizados, las medias aritméticas y la desviación estándar. En los casos en que no se informaron las desviaciones estándar, se obtuvieron a partir del error estándar de la media. También se extrajeron los datos sobre los eventos adversos informados. Se estableció contacto con los autores de los ensayos en los casos en que los detalles relevantes no estaban registrados o eran poco claros. Los desacuerdos se resolvieron por consenso o, cuando fue necesario, por consulta con el editor del Grupo Cochrane de Enfermedades Infecciosas (CIDG). El primer autor introdujo los datos en Review Manager 5.
Evaluación del riesgo de sesgo en los estudios incluidos
Ambos autores evaluaron de forma independiente el riesgo de sesgo de los ensayos elegibles con un formulario especialmente diseñado probado con anterioridad. Se evaluó la generación de la secuencia de asignación y la ocultación de la asignación como adecuada, inadecuada o incierta según Jüni 2001. Se informó quiénes (participantes, profesional de la atención, o evaluador) estaban cegados en cada ensayo. La inclusión en el análisis de todos los participantes con cultivo positivo asignados al azar se consideró adecuada si el 90% o más estaban incluidos, inadecuada si menos del 90%, e incierta si el porcentaje no fue indicado. Los desacuerdos se resolvieron por discusión o consulta con el editor del Grupo Cochrane de Enfermedades Infecciosas (CIDG). Se Intentó establecer contacto con los autores de los ensayos en los casos en que el método no estaba indicado o era incierto.
Síntesis de los datos
Los datos se analizaron con el uso del Review Manager 5. Todos los resultados se presentaron con los intervalos de confianza (IC) del 95%. Los datos dicotómicos se presentaron y se compararon con el uso de los odds ratio. En los casos en que se informaron las medias aritméticas y las desviaciones estándar (DE), se combinaron los datos continuos con la diferencia de medias (DM). En los casos en que se informaron las medias aritméticas de un resultado y la escala se iniciaba en cero, se usó el cociente de la media con la desviación estándar para comprobar la presuposición de que los datos tenían una distribución normal. Si se sospechaba que los datos eran asimétricos (media/DE < 2), entonces no se combinaron los datos en un metanálisis.
Análisis de subgrupos e investigación de la heterogeneidad
Se evaluó la heterogeneidad entre los ensayos por la inspección del diagrama de bosque (forest plot) y con la prueba de ji cuadrado (heterogeneidad si el valor de P < 0,1) y la prueba I2 (50% representa un nivel moderado de heterogeneidad). En los casos en que en algún resultado se detectó heterogeneidad entre los ensayos, se combinaron con el uso del modelo de efectos aleatorios. Se propuso realizar un análisis de subgrupos por la edad de los participantes (niños versus adultos), la hospitalización (hospitalizado o no), la presencia de resistencia a múltiples fármacos y la duración del tratamiento, pero no fue posible ya que hubo pocos ensayos con un número limitado de participantes.
Análisis de sensibilidad
No se pudieron realizar análisis de sensibilidad para explorar el efecto sobre los resultados del riesgo de sesgo de evaluación de los ensayos, en particular de la ocultación de la asignación. No se pudo realizar este análisis porque hubo pocos ensayos en cada comparación. Por la misma razón, el sesgo de publicación no se pudo evaluar mediante el gráfico en embudo (funnel plot).
| DESCRIPCIÓN DE LOS ESTUDIOS |
|
Ver: Características de los estudios incluidos; Características de los estudios excluidos; Características de los estudios en curso.
Selección de ensayos
Se identificaron y evaluaron 11 ensayos para considerar si eran elegibles. Siete ensayos con 773 participantes cumplieron los criterios de inclusión (Butler 1999; Girgis 1999; Chinh 2000; Frenck 2000; Frenck 2004; Parry 2007; Dolecek 2008)); ver los detalles en "Características de estudios incluidos'. Se excluyeron cuatro (Wallace 1994; Tribble 1995; Chiu 1999; Li 2005)); ver los detalles en "Características de los estudios excluidos'. También se identificó un estudio en curso y se describe en "Características de los estudios en curso" (ISRCTN66534807).
Diseño y lugar del ensayo
Tres ensayos se realizaron en Egipto (Girgis 1999; Frenck 2000; Frenck 2004), tres en Vietnam (Chinh 2000; Parry 2007; Dolecek 2008), y uno en India (Butler 1999). Ambos Butler 1999y Dolecek 2008 eran multicéntricos.
Participantes
Tres ensayos incluyeron sólo adultos con mínimo de la edad informada de 15 años (Butler 1999; Girgis 1999; Chinh 2000)). Dos ensayos se realizaron exclusivamente en niños y adolescentes con una edad mínima de tres años y máxima de 17 años (Frenck 2000; Frenck 2004)). Dos ensayos tenían como participantes niños y adultos con un rango de edad de uno a 42 años (Parry 2007; Dolecek 2008)). Todos los ensayos se realizaron en pacientes hospitalizados que tenían fiebre entérica no complicada y que presentaron cultivos positivos en sangre o heces de S. Typhi o S. Paratyphi. Todos los ensayos tenían participantes con cepas RMF de S. Typhi. En dos ensayos, Chinh 2000 y Dolecek 2008, más de la mitad de los participantes eran pacientes con infección por cepas RMF de S. Typhi, mientras que en otro ensayo, Parry 2007, más del 80% de las cepas eran RMF. Cerca del 100% eran cepas de S. Typhi RaN en Parry 2007 y Dolecek 2008.
Criterios de inclusión y exclusión
Todos los ensayos incluidos informaron criterios de inclusión y exclusión bien definidos. Los criterios para el reclutamiento fueron clínicos, pero se requería un cultivo positivo de heces o sangre con S. Typhi o S. Paratyphi para la inclusión en el estudio. Todos los ensayos excluyeron las mujeres embarazadas y que amamantaban, y las que tenían enfermedades subyacentes graves, tratamientos previos con antibióticos, enfermedad grave y antecedentes de alergia a cualquiera de los fármacos del estudio.
Intervenciones
Ensayos que compararon la azitromicina con la ceftriaxona (Frenck 2000; Frenck 2004), ciprofloxacina (Girgis 1999), ofloxacina (Chinh 2000; Parry 2007), gatifloxacina (Dolecek 2008), y el cloranfenicol (Butler 1999)). Ningún ensayo comparó la azitromicina con otros antibióticos de primera línea como la ampicilina y el cotrimoxazol.
Los siete ensayos usaron un tratamiento con azitromicina de corta duración (cinco a siete días). Dos ensayos trataron a los participantes durante cinco días (Chinh 2000; Frenck 2004), mientras que los otros cinco ensayos usaron un régimen de siete días (Butler 1999; Girgis 1999; Frenck 2000; Parry 2007; Dolecek 2008)).
Medidas de resultado
Medidas de resultado primarias
Las definiciones y los puntos temporales en los que se midieron las medidas de resultado primarias variaron. Algunos ensayos consideraron la respuesta como “curación clínica” o “curación microbiológica”. En dos ensayos el fracaso microbiológico no se definió explícitamente (Butler 1999; Frenck 2000) y en otros dos ensayos la definición del tiempo de desaparición de la fiebre fue incierto (Frenck 2000; Frenck 2004)); ver detalles en Tabla 2. Se pudieron extraer los datos sobre ambas medidas de resultado primarias (fracaso clínico y fracaso microbiológico) de los siete ensayos.
Table 2 Definitions of outcome measures
| Comparison | Trial | Clinical failure | Microbiological failure | Relapse | Fever clearance time | | Azithromycin vs chloramphenicol | Butler 1999 | Lack of improvement or worsening of signs and symptoms or need to change antibiotic therapy | Not defined | Clinical: return of fever after day 14 Bacteriological recurrence: blood culture positive for S. Typhi or S. Paratyphi on day 21 or 35 days after start of therapy | Not defined | | Azithromycin vs fluoroquinolones | Girgis 1999 | Lack of resolution of symptoms by day 7 or development of a major complication of typhoid fever after 5 days of therapy | Blood culture positive for S. Typhi or S. Paratyphi on day 4 or 10 | Recurrence of fever with signs and symptoms of typhoid fever within 4 weeks of therapy completion along with isolation of organism in culture | First day on which maximum temperature < 38.0 °C with maintenance of temperature at this level for at least 48 hours | | Chinh 2000 | Persistence of fever and symptoms for > 5 days after end of treatment or development of severe complications during treatment, requiring a change in therapy | Isolation of S. Typhi or serovar S. Paratyphi A from blood or a sterile site after completion of treatment | Recurrence of symptoms and signs suggestive of enteric fever after the participant had been discharged as well from the hospital | Time from start of treatment until the body temperature fell < 37.5 °C and remained at < 37.5 °C for 48 hours | | Parry 2007 | Persistence of fever and at least 1 other typhoid related symptom for > 7 days after start of treatment, or development of complications during treatment requiring change in therapy | Isolation of S. Typhi or Paratyphi from blood or sterile site after completion of treatment | Recurrence of symptoms and signs suggestive of enteric fever within the 4-week period after participant discharged from hospital plus blood culture positive for S. Typhi or S. Paratyphi | Time from start of treatment until body temperature 37.5 °C and remained so for 48 hours | | Dolecek 2008 | Persistence of fever and symptoms 2 days after end of treatment, ie on day 10 or need for re-treatment due to insufficient treatment response as judged by the treating physician | Positive blood culture on day 7 to 9 after start of treatment | Occurrence of symptoms and signs of typhoid fever within 1 month after completion of treatment | Time from the start of the antibiotic treatment to when the axillary temperature first fell = 37.5 ºC and remained there for at least 48 hours | | Azithromycin vs ceftriaxone | Frenck 2000 | Persistence of > 1 typhoid-related symptom or sign present at study entry, or development of a typhoid-related complication after at least 4 days of therapy | Not defined | Recurrence of fever with symptoms of typhoid fever within 4 weeks of completion of therapy along with isolation of S. Typhi or S. Paratyphi from blood | Not defined | | Frenck 2004 | Persistence of > 2 typhoid-related symptoms or signs present at study entry or as development of a typhoid-related complication | Blood culture positive for S. Typhi on day 8 | Recurrence of fever and clinical features of typhoid within 30 days of completing therapy, along with isolation of S. Typhi from the blood | Not defined |
|
Medidas de resultado secundarias
Se pudieron extraer los datos de las tres medidas de resultado secundarias (tiempo de desaparición de la fiebre, recaída y duración de la estancia hospitalaria) de sólo dos ensayos (Chinh 2000; Parry 2007)). Aparte de Frenck 2000 y Frenck 2004, los otros tres ensayos no incluyeron datos sobre la duración de la estancia hospitalaria.
Se pudieron extraer los datos sobre los eventos adversos (clínicos y de laboratorio) de cuatro ensayos (Girgis 1999; Chinh 2000; Frenck 2004; Dolecek 2008)). Un estudio sólo informó los eventos adversos basados en el laboratorio (Frenck 2000), mientras que un estudio informó sólo los eventos adversos clínicos (Butler 1999)).
Cepas RMF y RaN
Los siete ensayos informaron la proporción de participantes con cepas RMF. Un ensayo no especificó la proporción en el brazo de estudio (Butler 1999), y sólo tres ensayos indicaron la proporción de participantes con cepas RaN en cualquiera de los brazos de estudio (Chinh 2000; Parry 2007; Dolecek 2008),). En términos generales, entre un 1,5% y un 85% de los participantes estaban infectados con cepas RMF, especialmente de S. Typhi; ver Tabla 3 para obtener detalles.
Table 3 Participants with MDR and NaR strains
| Comparison | Trial | Participants | Culture positive (site) | S. Typhi/Paratyphi | Number (%) with MDR | Number (%) with NaR | Notes | | Azithromycin vs chloramphenicol | Butler 1999 | 109 enrolled and randomized | 92 (blood) | 82/10 azithromycin | 38/4 chloramphenicol | 29/6 15 participants excluded for various reasons | 10 (11%) | Not stated | — | | Azithromycin vs fluoroquinolone | Chinh 2000 | 97 enrolled and randomized | 88 (blood) | 86/2 not stated | 68 (77.2%) | Azithromycin: 33 | Fluoroquinolone 35 | 46 (52%) | Azithromycin: 25 | Fluoroquinolon: 21 | 1 isolate was not available for sensitivity testing | | Girgis 1999 | 123 enrolled and randomized | 52 (blood); 2 (stool); 10 (both blood and stool) | 34/2 azithromycin | 26/2 ciprofloxacin | 21 (33%) | Azithromycin: 6 | Fluoroquinolone: 15 | Not stated | — | | Parry 2007 | 241 enrolled and randomized | 199 (blood or bone marrow) | 198/1 | 62/0 azithromycin | 63/0 ofloxacin | 62/1 ofloxacin-azithromycin | 165 (83%) | Azithromycin: 53 | Fluoroquinolone: 57 | 172 (86%) | Azithromycin 55 (89%) | Fluoroquinolone 62 (98%) | This study had 3 arms | | Dolecek 2008 | 358 enrolled and randomized | 288 (blood or bone marrow) | 144/1 gatifloxacin | 138/4 azithromycin | 153 (58%) | Gatifloxacin: 87 (63.5%) | Azithromycin: 66 (52.3%) | 254 (96.5%) | Gatifloxacin:132 (96.3%) | Azithromycin:121 | (96%) | Only 263 isolates had antibiotic susceptibility testing | | Azithromycin vs ceftriaxone | Frenck 2000 | 108 enrolled and randomized | 64 (blood) | 64/0 | 11 (17.2%) | Not stated | — | | Frenck 2004 | 128 enrolled and randomized | 65 (blood); 13 (stool) | 64/0 | 1 (1.5%) | Not stated | — |
|
Ver Riesgo de sesgo en los estudios incluidos
Ver: Características de los estudios incluidos; Características de los estudios excluidos; Características de los estudios en curso.
Selección de ensayos
Se identificaron y evaluaron 11 ensayos para considerar si eran elegibles. Siete ensayos con 773 participantes cumplieron los criterios de inclusión (Butler 1999; Girgis 1999; Chinh 2000; Frenck 2000; Frenck 2004; Parry 2007; Dolecek 2008)); ver los detalles en "Características de estudios incluidos'. Se excluyeron cuatro (Wallace 1994; Tribble 1995; Chiu 1999; Li 2005)); ver los detalles en "Características de los estudios excluidos'. También se identificó un estudio en curso y se describe en "Características de los estudios en curso" (ISRCTN66534807)).
Diseño y lugar del ensayo
Tres ensayos se realizaron en Egipto (Girgis 1999; Frenck 2000; Frenck 2004), tres en Vietnam (Chinh 2000; Parry 2007; Dolecek 2008), y uno en India (Butler 1999)). Ambos Butler 1999 y Dolecek 2008 eran multicéntricos.
Participantes
Tres ensayos incluyeron sólo adultos con mínimo de la edad informada de 15 años (Butler 1999; Girgis 1999; Chinh 2000)). Dos ensayos se realizaron exclusivamente en niños y adolescentes con una edad mínima de tres años y máxima de 17 años (Frenck 2000; Frenck 2004)). Dos ensayos tenían como participantes niños y adultos con un rango de edad de uno a 42 años (Parry 2007; Dolecek 2008)). Todos los ensayos se realizaron en pacientes hospitalizados que tenían fiebre entérica no complicada y que presentaron cultivos positivos en sangre o heces de S. Typhi o S. Paratyphi. Todos los ensayos tenían participantes con cepas RMF de S. Typhi. En dos ensayos, Chinh 2000 y Dolecek 2008, más de la mitad de los participantes estaban infectados con cepas RMF de S. Typhi, mientras que en otro ensayo, Parry 2007, más del 80% de las cepas eran RMF. Cerca del 100% eran cepas de S. Typhi RaN en Parry 2007 y Dolecek 2008.
Criterios de inclusión y exclusión
Todos los ensayos incluidos informaron criterios de inclusión y exclusión bien definidos. Los criterios para el reclutamiento fueron clínicos, pero se requería un cultivo positivo de heces o sangre con S. Typhi o S. Paratyphi para la inclusión en el estudio. Todos los ensayos excluyeron las mujeres embarazadas y que amamantaban, y las que tenían enfermedades subyacentes graves, tratamientos previos con antibióticos, enfermedad grave y antecedentes de alergia a cualquiera de los fármacos del estudio.
Intervenciones
Ensayos que compararon la azitromicina con la ceftriaxona (Frenck 2000; Frenck 2004), ciprofloxacina (Girgis 1999), ofloxacina (Chinh 2000; Parry 2007), gatifloxacina (Dolecek 2008), y el cloranfenicol (Butler 1999)). Ningún ensayo comparó la azitromicina con otros antibióticos de primera línea como la ampicilina y el cotrimoxazol.
Los siete ensayos usaron un tratamiento con azitromicina de corta duración (cinco a siete días). Dos ensayos trataron los participantes durante cinco días (Chinh 2000; Frenck 2004), mientras que los otros cinco ensayos usaron un régimen de siete días (Butler 1999; Girgis 1999; Frenck 2000; Parry 2007; Dolecek 2008)).
Medidas de resultado
Medidas de resultado primarias
Las definiciones y los puntos temporales en los que se realizó la evaluación de las medidas de resultado primarias fueron diferentes. Algunos ensayos consideraron la respuesta como “curación clínica” o “curación microbiológica”. En dos ensayos el fracaso microbiológico no se definió explícitamente (Butler 1999; Frenck 2000) y en otros dos ensayos la definición del tiempo de desaparición de la fiebre fue incierto (Frenck 2000; Frenck 2004)); ver detalles en Tabla 2. Se pudieron extraer los datos sobre ambas medidas de resultado primarias (fracaso clínico y fracaso microbiológico) de los siete ensayos.
Table 2 Definitions of outcome measures
| Comparison | Trial | Clinical failure | Microbiological failure | Relapse | Fever clearance time | | Azithromycin vs chloramphenicol | Butler 1999 | Lack of improvement or worsening of signs and symptoms or need to change antibiotic therapy | Not defined | Clinical: return of fever after day 14 Bacteriological recurrence: blood culture positive for S. Typhi or S. Paratyphi on day 21 or 35 days after start of therapy | Not defined | | Azithromycin vs fluoroquinolones | Girgis 1999 | Lack of resolution of symptoms by day 7 or development of a major complication of typhoid fever after 5 days of therapy | Blood culture positive for S. Typhi or S. Paratyphi on day 4 or 10 | Recurrence of fever with signs and symptoms of typhoid fever within 4 weeks of therapy completion along with isolation of organism in culture | First day on which maximum temperature < 38.0 °C with maintenance of temperature at this level for at least 48 hours | | Chinh 2000 | Persistence of fever and symptoms for > 5 days after end of treatment or development of severe complications during treatment, requiring a change in therapy | Isolation of S. Typhi or serovar S. Paratyphi A from blood or a sterile site after completion of treatment | Recurrence of symptoms and signs suggestive of enteric fever after the participant had been discharged as well from the hospital | Time from start of treatment until the body temperature fell < 37.5 °C and remained at < 37.5 °C for 48 hours | | Parry 2007 | Persistence of fever and at least 1 other typhoid related symptom for > 7 days after start of treatment, or development of complications during treatment requiring change in therapy | Isolation of S. Typhi or Paratyphi from blood or sterile site after completion of treatment | Recurrence of symptoms and signs suggestive of enteric fever within the 4-week period after participant discharged from hospital plus blood culture positive for S. Typhi or S. Paratyphi | Time from start of treatment until body temperature 37.5 °C and remained so for 48 hours | | Dolecek 2008 | Persistence of fever and symptoms 2 days after end of treatment, ie on day 10 or need for re-treatment due to insufficient treatment response as judged by the treating physician | Positive blood culture on day 7 to 9 after start of treatment | Occurrence of symptoms and signs of typhoid fever within 1 month after completion of treatment | Time from the start of the antibiotic treatment to when the axillary temperature first fell = 37.5 ºC and remained there for at least 48 hours | | Azithromycin vs ceftriaxone | Frenck 2000 | Persistence of > 1 typhoid-related symptom or sign present at study entry, or development of a typhoid-related complication after at least 4 days of therapy | Not defined | Recurrence of fever with symptoms of typhoid fever within 4 weeks of completion of therapy along with isolation of S. Typhi or S. Paratyphi from blood | Not defined | | Frenck 2004 | Persistence of > 2 typhoid-related symptoms or signs present at study entry or as development of a typhoid-related complication | Blood culture positive for S. Typhi on day 8 | Recurrence of fever and clinical features of typhoid within 30 days of completing therapy, along with isolation of S. Typhi from the blood | Not defined |
|
Medidas de resultado secundarias
Se pudieron extraer los datos de las tres medidas de resultado secundarias (tiempo de desaparición de la fiebre, recaídas y duración de la estancia hospitalaria) de sólo dos ensayos (Chinh 2000; Parry 2007)). Aparte de Frenck 2000 y Frenck 2004, los otros tres ensayos no incluyeron datos sobre la duración de la estancia hospitalaria.
Se pudieron extraer los datos sobre los eventos adversos (clínicos y de laboratorio) de cuatro ensayos (Girgis 1999; Chinh 2000; Frenck 2004; Dolecek 2008)). Un estudio sólo informó eventos adversos basados en el laboratorio (Frenck 2000), mientras que un estudio informó sólo los eventos adversos clínicos (Butler 1999)).
cepas RMF y RaN
Los siete ensayos informaron la proporción de participantes con cepas RMF. Un ensayo no especificó la proporción en el brazo de estudio (Butler 1999), y sólo tres ensayos indicaron la proporción de participantes con cepas RaN en el brazo de estudio (Chinh 2000; Parry 2007; Dolecek 2008),). En términos generales, entre un 1,5% y un 85% de los participantes estaban infectados con cepas RMF, especialmente de S. Typhi; ver Tabla 3 para obtener detalles.
Table 3 Participants with MDR and NaR strains
| Comparison | Trial | Participants | Culture positive (site) | S. Typhi/Paratyphi | Number (%) with MDR | Number (%) with NaR | Notes | | Azithromycin vs chloramphenicol | Butler 1999 | 109 enrolled and randomized | 92 (blood) | 82/10 azithromycin | 38/4 chloramphenicol | 29/6 15 participants excluded for various reasons | 10 (11%) | Not stated | — | | Azithromycin vs fluoroquinolone | Chinh 2000 | 97 enrolled and randomized | 88 (blood) | 86/2 not stated | 68 (77.2%) | Azithromycin: 33 | Fluoroquinolone 35 | 46 (52%) | Azithromycin: 25 | Fluoroquinolon: 21 | 1 isolate was not available for sensitivity testing | | Girgis 1999 | 123 enrolled and randomized | 52 (blood); 2 (stool); 10 (both blood and stool) | 34/2 azithromycin | 26/2 ciprofloxacin | 21 (33%) | Azithromycin: 6 | Fluoroquinolone: 15 | Not stated | — | | Parry 2007 | 241 enrolled and randomized | 199 (blood or bone marrow) | 198/1 | 62/0 azithromycin | 63/0 ofloxacin | 62/1 ofloxacin-azithromycin | 165 (83%) | Azithromycin: 53 | Fluoroquinolone: 57 | 172 (86%) | Azithromycin 55 (89%) | Fluoroquinolone 62 (98%) | This study had 3 arms | | Dolecek 2008 | 358 enrolled and randomized | 288 (blood or bone marrow) | 144/1 gatifloxacin | 138/4 azithromycin | 153 (58%) | Gatifloxacin: 87 (63.5%) | Azithromycin: 66 (52.3%) | 254 (96.5%) | Gatifloxacin:132 (96.3%) | Azithromycin:121 | (96%) | Only 263 isolates had antibiotic susceptibility testing | | Azithromycin vs ceftriaxone | Frenck 2000 | 108 enrolled and randomized | 64 (blood) | 64/0 | 11 (17.2%) | Not stated | — | | Frenck 2004 | 128 enrolled and randomized | 65 (blood); 13 (stool) | 64/0 | 1 (1.5%) | Not stated | — |
|
Riesgo de sesgo en los estudios incluidos
Ver Tabla 4 para un resumen de la evaluación del riesgo de sesgo.
Table 4 Risk of bias assessment
| Comparison | Trial | Allocation sequence generation | Allocation concealment | Blinding | Randomized participants in the analysis | | Azithromycin vs chloramphenicol | Butler 1999 | Adequate | Adequate | Open | Inadequate | | Azithromycin vs ofloxacin | Chinh 2000 | Adequate | Adequate | Open | Adequate | | Azithromycin vs gatifloxacin | Dolecek 2008 | Adequate | Adequate | Open | Adequate | | Azithromycin vs ciprofloxacin | Girgis 1999 | Adequate | Adequate | Open | Adequate | | Azithromycin vs ofloxacin | Parry 2007 | Adequate | Adequate | Open | Adequate | | Azithromycin vs ceftriaxone | Frenck 2000 | Adequate | Adequate | Open | Adequate | | Azithromycin vs ceftriaxone | Frenck 2004 | Adequate | Adequate | Open | Adequate |
|
Generación de la secuencia de la asignación
Los siete ensayos incluidos usaron un método adecuado para generar la secuencia de asignación: lista de números aleatorios (Frenck 2000; Girgis 1999)); tabla de números aleatorios (Butler 1999)); generador de números aleatorios (Frenck 2004)); y una lista de asignación al azar generada por un sistema informático (Chinh 2000; Parry 2007; Dolecek 2008)).
Ocultación de la asignación
Todos los ensayos incluidos usaron un método adecuado para ocultar la asignación (sobres cerrados).
Cegamiento
Seis ensayos se describieron como abiertos para los participantes y para los médicos/cuidadores (Butler 1999; Girgis 1999; Chinh 2000; Frenck 2000; Frenck 2004; Parry 2007). Dolecek 2008) se describieron sencillamente como abiertos. Un ensayo indicó específicamente que los evaluadores de resultado no estaban cegados (Butler 1999), mientras que se obtuvo información similar de los investigadores de otros dos ensayos (Chinh 2000; Parry 2007)). El cegamiento de los evaluadores de resultado fue incierto en tres ensayos (Girgis 1999; Frenck 2000; Frenck 2004)).
Inclusión de todos los participantes con cultivos positivos en el análisis final
En los siete ensayos se consideraron para la evaluación sólo los participantes con cultivo positivo. Seis ensayos incluyeron un 90% o más de participantes con cultivos positivos en el análisis final, mientras que Butler 1999 incluyó un 84%.
Análisis del tipo intención de tratar (intention-to-treat analyses
En todos menos en Dolecek 2008 el análisis de los resultados de los ensayos realizado por los autores no fue del tipo intención de tratar (intention-to-treat analysis), porque excluyeron a los participantes con cultivos negativos. Los análisis se realizaron como estaba establecido en el protocolo (de acuerdo al protocolo) y del tipo intención de tratar (intention-to-treat analysis) en Dolecek 2008; se usaron los datos por protocolo en esta revisión.
Efectos de las intervenciones
1. Azitromicina versus cloranfenicol
Fracaso clínico y microbiológico
Un ensayo con 77 participantes, que incluyó 11% de participantes con cepas RMF de S. Typhi, realizó esta comparación (Butler 1999)). Hubo una tendencia de la azitromicina a tener una probabilidad menor de fracaso clínico, pero los resultados no fueron estadísticamente significativos (77 participantes, Comparación 1 Azitromicina [AZM] versus cloranfenicol [CM], Resultado 1 Fracaso clínico.). No hubo diferencias estadísticamente significativas de la probabilidad de fracaso microbiológico en ambos grupos (77 participantes, Comparación 1 Azitromicina [AZM] versus cloranfenicol [CM], Resultado 2 Fracaso microbiológico.).
Recaídas
No se informaron recaídas.
Tiempo de desaparición de la fiebre
El tiempo de desaparición de la fiebre fue más corto en el grupo con azitromicina (media 98,4 horas) comparado con el grupo con cloranfenicol (media 103,2 horas), pero los resultados no fueron estadísticamente significativos (77 participantes, Comparación 1 Azitromicina [AZM] versus cloranfenicol [CM], Resultado 3 Tiempo de desaparición de la fiebre [horas].).
Duración de la estancia hospitalaria
No se informaron datos de la duración de la estancia hospitalaria.
Eventos adversos
No se informaron datos sobre eventos adversos graves (Tabla 5). Otros cinco eventos adversos se informaron en el grupo con azitromicina (Tabla 6), dos fueron del sistema gastrointestinal (ningún detalle de los otros tres). No se informaron otros eventos adversos en el grupo con cloranfenicol (77 participantes, FIG01, Comparación 1 Azitromicina [AZM] versus cloranfenicol [CM], Resultado 4 Eventos adversos [excluidos los eventos adversos graves].).
Table 5 Serious adverse events
Table 6 Other adverse events
| Comparison | Trial | Clinical adverse eventsa | Laboratory adverse eventsa | | Intervention | Control | Intervention | Control | | Azithromycin vs chloramphenicol | Butler 1999 | Azithromycin: 5 gastrointestinal (2) others not stated | None | Not described | Not described | | Azithromycin vs fluoroquinolone | Chinh 2000 | Azithromycin: | Gastrointestinal bleeding (1); nausea (5); vomiting (5); abdominal pain (4); skin rash (1) | Ofloxacin | Gastrointestinal bleeding; nausea (1); vomiting (3); abdominal pain (4); skin rash (0) | Azithromycin: mild elevation in mean transaminase levels | Ofloxacin: mild elevation in mean transaminase levels | | Girgis 1999 | Azithromycin: nausea or vomiting (6); lightheadedness (2); dry throat or mouth (3); loose stools (3); constipation (2) | Ciprofloxacin: nausea or vomiting (4); lightheadedness (2); dry throat or mouth (4); loose stools (3); constipation (2) | Azithromycin: thrombocytosis (4); mild increase in aspartate amino transaminase levels (2) | Ciprofloxacin: thrombocytosis (1); mild increases in aspartate transaminases levels (3) | | Parry 2007 | Azithromycin: joint discomfort (1) | Ofloxacin: joint discomfort | Azithromycin: none | Ofloxacin: none | | Dolecek 2008 | Azithromycin: | Gastrointestinal bleeding (4) | Liver dysfunction (2) | Maculopapular rash (1) | Pneumonia (2) | Gatifloxacin: vomiting (1); diarrhoea (1) | Azithromycin: mild elevations in median transaminase levels | Gatifloxacin: mild elevations in median transaminase levels | | Azithromycin vs ceftriaxone | Frenck 2000 | Azithromycin: gastrointestinal symptoms most commonly vomiting | Ceftriaxone: gastrointestinal symptom less; pains at injection site (6) | Azithromycin: mild elevation in alanine aminotransferase (1) and aspartate transaminases (2); thrombocytosis (4) | Ceftriaxone: mild elevations in alanine transaminase (1) and aspartate transaminase (4), thrombocytosis (3) | | Frenck 2004 | Azithromycin: vomiting (11); diarrhoea (10); nausea (5); abdominal pain (3); anorexia (3); cough (3) | Ceftriaxone: vomiting (7); diarrhoea (15); nausea (7); abdominal pain (5); anorexia (6); cough (2) | Azithromycin: mild increases in aspartate transaminase levels (2) and alanine transaminase levels (2); thrombocytosis (7) | Ceftriaxone: mild increases in aspartate transaminase levels (2) and alanine transaminase levels (5); thrombocytosis (7) |
|
FIG01
 Haga clic en la imagen pequeña para visualizar la imagen a tamaño natural
| Azitromicina [AZM] versus cloranfenicol [CM]: Eventos adversos (excluyendo eventos adversos graves)
|
|
2. Azitromicina versus fluoroquinolonas
Cuatro ensayos con 564 participantes compararon la azitromicina con la ciprofloxacina (Girgis 1999, 64 participantes), ofloxacina (Chinh 2000, 88 participantes y Parry 2007, 125 participantes), y gatifloxacina (Dolecek 2008, 287 participantes). Los ensayos tuvieron diversas proporciones de participantes con cepas RMF y RaN. En Girgis 1999, un tercio de los participantes estaba infectado con cepas RMF, con un 16,6% de los participantes en el grupo con azitromicina y un 53,6% en el grupo con ciprofloxacina. Más de la mitad (77%) de los participantes en Chinh 2000 tenía cepas RMF de S. Typhi: 48,5% eran del grupo con azitromicina y 51,5 % del grupo con ofloxacina. Además, 46 participantes (52%) estaban infectados con cepas RaN, 25 en el grupo con azitromicina y 21 en el grupo con fluoroquinolona. De los participantes en Parry 2007, 85% y 89% del grupo con azitromicina estaban infectados con cepas RMF y RaN, respectivamente, comparado con un 90% y 98% respectivamente en el grupo con ofloxacina. En Dolecek 2008, 58% de las cepas informadas eran RMF (87 en el brazo con gatifloxacina y 66 en el grupo con azitromicina), mientras que un 96% eran RaN (132 en el brazo con gatifloxacina y 121 en el brazo con azitromicina).
Fracaso clínico y microbiológico
Hubo menos fracasos clínicos con la azitromicina (OR 0,48, IC del 95%: 0,26 a 0,89; 564 participantes, cuatro ensayos, FIG02, Comparación 2 Azitromicina [AZM] versus fluoroquinolonas [FQ], Resultado 1 Fracaso clínico.). No hubo diferencias estadísticamente significativas del fracaso microbiológico (564 participantes, cuatro ensayos, Comparación 2 Azitromicina [AZM] versus fluoroquinolonas [FQ], Resultado 2 Fracaso microbiológico.) ni de la recaída (491 participantes, cuatro ensayos, Comparación 2 Azitromicina [AZM] versus fluoroquinolonas [FQ], Resultado 3 Recaída.).
FIG02
 Haga clic en la imagen pequeña para visualizar la imagen a tamaño natural
| Azitromicina [AZM] versus fluoroquinolonas [FQ]: Fracaso clínico
|
|
Recaída
No hubo diferencias estadísticamente significativas de las recaídas (491 participantes, cuatro ensayos, Comparación 2 Azitromicina [AZM] versus fluoroquinolonas [FQ], Resultado 3 Recaída.).
Tiempo de desaparición de la fiebre
Hubo marcada heterogeneidad del tiempo de desaparición de la fiebre, sin diferencia significativa entre las intervenciones cuando se analizó con el modelo de efectos aleatorios (564 participantes, cuatro ensayos, FIG03, Comparación 2 Azitromicina [AZM] versus fluoroquinolonas [FQ], Resultado 4 Tiempo de desaparición de la fiebre [horas].). La heterogeneidad puede explicarse por las diferencias de la definición del tiempo de desaparición de la fiebre y las diferentes fluoroquinolonas usadas en los cuatro ensayos.
FIG03
 Haga clic en la imagen pequeña para visualizar la imagen a tamaño natural
| Azitromicina [AZM] versus fluoroquinolonas [FQ]: Tiempo de desaparición de la fiebre [h]
|
|
Duración de la estancia hospitalaria
Dos ensayos informaron sobre la duración de la estancia hospitalaria (Chinh 2000; Parry 2007), que fue significativamente más corta en el grupo con azitromicina (DM -1,04 días, IC del 95%: -1,73 a -0,34 días; 213 participantes, dos ensayos, FIG04, Comparación 2 Azitromicina [AZM) versus fluoroquinolonas [FQ], Resultado 5 Duración de la estancia hospitalaria [días].).
FIG04
 Haga clic en la imagen pequeña para visualizar la imagen a tamaño natural
| Azitromicina [AZM] versus fluoroquinolonas [FQ]: Duración de la estancia hospitalaria (días)
|
|
Eventos adversos
Ningún ensayo informó eventos adversos graves (ver Tabla 5). Los eventos adversos que causaron la interrupción de la administración del fármaco del ensayo fueron hemorragia gastrointestinal en cuatro participantes y erupción cutánea maculopapular en un participante. Ambos eventos fueron en el brazo con azitromicina de Dolecek 2008. Hubo un solo evento de hemorragia gastrointestinal en cada brazo de Chinh 2000, pero los fármacos del ensayo no se interrumpieron (Tabla 6).
Otros eventos adversos clínicos frecuentes informados en ambos brazos de todos los ensayos incluidos fueron las náuseas, los vómitos, los dolores abdominales y la erupción cutánea. En Dolecek 2008, dos participantes en el brazo con azitromicina desarrollaron rasgos de disfunción hepática y otros dos tuvieron neumonía. Un participante en cada uno de los grupos de tratamiento con azitromicina y ofloxacina, informó molestias articulares en Parry 2007. Los eventos adversos basados en el laboratorio fueron la trombocitosis y un aumento en los niveles de la enzima aspartato aminotransaminasas, pero no fueron diferentes entre los grupos de tratamiento.
3. Azitromicina versus ceftriaxona
Dos ensayos con 132 niños hicieron esta comparación (Frenck 2000; Frenck 2004)). Cerca del 17% de los participantes tuvieron cepas de S. Typhi RMF en Frenck 2000, mientras que Frenck 2004 informó sólo un participante con cepas RMF.
Fracaso clínico y microbiológico
No hubo diferencias estadísticamente significativas entre los dos grupos de la probabilidad de fracaso clínico (132 participantes, dos ensayos, Comparación 3 Azitromicina [AZM] versus ceftriaxona [CRO], Resultado 1 Fracaso clínico.) ni de fracaso microbiológico (132 participantes, dos ensayos, Comparación 3 Azitromicina [AZM] versus ceftriaxona [CRO], Resultado 2 Fracaso microbiológico.).
Recaída
La probabilidad de recaída disminuyó en un 91% en el grupo con azitromicina y fue estadísticamente significativa, pero el número analizado es pequeño y los intervalos de confianza amplios (OR 0,09, IC del 95%: 0,01 a 0,70; 132 participantes, dos ensayos, FIG05, Comparación 3 Azitromicina [AZM] versus ceftriaxona [CRO], Resultado 3 Recaída.).
FIG05
 Haga clic en la imagen pequeña para visualizar la imagen a tamaño natural
| Azitromicina [AZM] versus ceftriaxona [CRO]: Recaída
|
|
Tiempo de desaparición de la fiebre
El tiempo de desaparición de la fiebre fue menor en el brazo con ceftriaxona, pero la diferencia no fue estadísticamente significativa (132 participantes, dos ensayos, Comparación 3 Azitromicina [AZM] versus ceftriaxona [CRO], Resultado 4 Tiempo de desaparición de la fiebre [horas].).
Duración de la estancia hospitalaria
Ningún ensayo informó la duración de la hospitalización.
Eventos adversos
No se informaron eventos adversos graves (Tabla 5). Ambos ensayos informaron síntomas gastrointestinales frecuentes en el grupo con azitromicina, los vómitos fueron los síntomas más frecuentes en Frenck 2000. El dolor en el sitio de la inyección se informó en seis participantes en el grupo con ceftriaxona. Otros eventos adversos incluyeron aumentos leves de la aspartato y alanina transaminasas, y trombocitosis en ambos grupos.
Siete ensayos cumplieron los criterios de inclusión y todos fueron realizados en países de ingresos bajos y medios. Estas áreas tienen una carga elevada de la enfermedad y presentan grandes oportunidades para la transmisión de la enfermedad, que incluyen la transmisión de las cepas de S. enterica resistentes a los antibióticos. La fiebre entérica causada por las cepas RMF y RaN es un problema significativo de salud pública, ya que parece ser responsable de los brotes epidémicos en estas áreas (Parry 2004)).
En general, la calidad metodológica de los siete ensayos incluidos fue alta. Por ejemplo, todos los ensayos utilizaron métodos adecuados para generar la secuencia de asignación y para ocultar la asignación. Los ensayos incluyeron adultos, niños, o ambos, y a todos los participantes se les realizó el diagnóstico definitivo con el aislamiento de la S. Typhi o S. Paratyphi de la sangre o las heces. La elección de los cultivos microbiológicos sobre el diagnóstico serológico puede ser debido a que las manifestaciones clínicas de la enfermedad pueden ser atípicas en niños y adultos, y en algunos adultos es difícil diferenciarlas de las de otras enfermedades febriles (Ferreccio 1984; Dutta 2001; Bhan 2005)). Sin embargo, el diagnóstico serológico con la reacción Widal u otras pruebas serológicas se usa ampliamente en las zonas endémicas, ya que se carece de establecimientos para cultivos microbiológicos (House 2001)). Pocos ensayos informaron la proporción de participantes con infección por cepas RMF o RaN. Sólo tres de los ensayos indicaron la proporción de cepas resistentes al ácido nalidíxico en los brazos del ensayo (Chinh 2000; Parry 2007; Dolecek 2008), aunque los informes de tales cepas son de hace más de diez años y se encuentran prácticamente en todos los continentes. La proporción de participantes con cepas RaN es particularmente importante para la comparación con las fluoroquinolonas, porque tales cepas pueden presentar menor sensibilidad a las fluoroquinolonas. Chinh 2000, Parry 2007, y Dolecek 2008 fueron tres de los cuatro ensayos que compararon la azitromicina con las fluoroquinolonas, y todos incluyeron una alta proporción de infecciones con cepas RaN. Sin embargo, las infecciones con cepas RaN no afectaron significativamente los resultados de ambos fármacos de intervención.
Los ensayos incluidos compararon la azitromicina con el cloranfenicol (Butler 1999), las fluoroquinolonas (ciprofloxacina (Girgis 1999), ofloxacina (Chinh 2000; Parry 2007), y gatifloxacina (Dolecek 2008)), y la ceftriaxona (Frenck 2000; Frenck 2004)). Otra revisión Cochrane sintetizó las pruebas de todas las fluoroquinolonas para el tratamiento de la fiebre entérica (Thaver 2008)). En términos generales, debido al pequeño número de ensayos elegibles para esta revisión, el tamaño de la muestra agrupada y los grandes intervalos de confianza de cada comparación, no se pueden plantear conclusiones firmes sobre el beneficio de la azitromicina sobre los otros fármacos. Sin embargo, se identificó un ensayo en curso y se espera que las actualizaciones futuras de esta revisión incluyan más datos y permitan realizar análisis adicionales (p.ej. análisis de subgrupos y sesgo de publicación).
Los resultados de esta revisión no se pueden generalizar ampliamente por diversas razones. La azitromicina se comparó con pocas alternativas donde otros fármacos tienen potencial; por ejemplo, hay informes de una reemergencia de cepas que son plenamente sensibles a los antibióticos de primera generación en Asia (Sood 1999; Gogia 2006)). El informe de los ensayos de la proporción de participantes con cepas resistentes al ácido nalidíxico fue deficiente. La respuesta de las cepas resistentes al ácido nalidíxico a los antibióticos es sumamente variable. Las cepas de S. Typhi y Paratyphi sensibles al ácido nalidíxico no necesariamente pueden ser sensibles a otras fluoroquinolonas. Todos los ensayos usaron un tratamiento de corta duración (cinco a siete días), lo que indica la necesidad de reducir los costos y de promover el cumplimiento del tratamiento y asegurar la efectividad; en efecto, los tratamientos de corta duración se asociaron con tasas mayores de recaídas en algunos estudios de la ceftriaxona (Smith 1994; Bhutta 2000)). Además, todos los participantes del ensayo estaban ingresados en el hospital, mientras que más del 90% de las personas en las zonas endémicas son tratados como pacientes ambulatorios (Parry 2002; Bhan 2005)). Dos ensayos usaron la ceftriaxona (que tiene que ser administrada parenteralmente), lo cual significa que los pacientes tienen que ingresar en un hospital, una práctica que aumenta el coste global del tratamiento de la enfermedad.
Los siete ensayos informaron sobre eventos adversos. La mayoría de los eventos adversos eran de naturaleza gastrointestinal, y fueron pocos y leves. La hemorragia digestiva ocurrió en un participante en cada uno de los brazos con azitromicina y fluoroquinolona en Chinh 2000, y en cuatro participantes del brazo con azitromicina en Dolecek 2008. También hubo pocos resultados de laboratorio anormales, como el aumento de las enzimas hepáticas y de los recuentos de plaquetas (trombocitosis). Cuatro ensayos compararon la azitromicina con las fluoroquinolonas, y hubo preocupación por el uso de las fluoroquinolonas en los niños basada en los informes que indican que las fluoroquinolonas causan deterioro articular en perros beagle que se encuentran en proceso de crecimiento (Burkhardt 1990; Stahlmann 2000)). Sin embargo, ninguna anomalía ósea, articular o de los ligamentos, se presentó como resultado del uso de las fluoroquinolonas a largo plazo en otras afecciones clínicas, como la fibrosis quística y el uso a corto plazo en el tratamiento de la fiebre tifoidea en pacientes con infección por cepas multirresistentes de S. Typhi (Schaad 1995; Doherty 2000)). No se informaron estos eventos adversos en los dos ensayos que compararon la azitromicina con una fluoroquinolona en niños y adultos (Parry 2007; Dolecek 2008)).
| CONCLUSIONES DE LOS AUTORES |
|
Implicaciones para la práctica
Hay pruebas limitadas sobre la superioridad de la azitromicina sobre los antibióticos de primera línea, las fluoroquinolonas, y las cefalosporinas, aun cuando se usan en pacientes con infección por cepas RMF o RaN de S. Typhi o S. Paratyphi, o ambas. Las pruebas disponibles indican que la azitromicina parece ser tan buena como los otros fármacos comparados en la mayoría de los resultados, y parece ser mejor que las fluoroquinolonas para disminuir el número de fracasos clínicos y la duración de la estancia hospitalaria, y que la ceftriaxona para disminuir las recaídas. Si se considera el potencial de desarrollo de la resistencia a cualquier antibiótico nuevo introducido, la azitromicina debe usarse con cautela para prevenir la aparición de cepas resistentes al fármaco.
Implicaciones para la investigación
Se deben realizar ensayos amplios, preferentemente multicéntricos, que incluyan a pacientes ambulatorios en áreas endémicas de fiebre entérica. Además, se deben realizar más ensayos que comparen la azitromicina con antibióticos de primera línea (por ejemplo, cloranfenicol, cotrimoxazol y amoxicilina), ya que son más baratos y tienen menos eventos adversos informados. Además, los revisores deben indicar claramente la proporción de participantes con infección por cepas RMF o RaN de S. Typhi. Se debe uniformar la definición de las medidas de resultado y realizar el seguimiento durante períodos más largos para evaluar el riesgo a largo plazo de eventos adversos y el uso de la azitromicina para prevenir el estado de portador crónico del microorganismo. Finalmente, se debe hacer un esfuerzo mayor en estandarizar el uso de las pruebas serológicas para el diagnóstico rápido de la fiebre entérica, ya que los establecimientos para el aislamiento de los microorganismos son costosos y, en consecuencia, no disponibles en las zonas endémicas.
A Emmanuel Effa se le adjudicó una revisión por Africa Programme Fellowship (www.mrc.ac.za/cochrane/rap.htm), financiada por el Nuffield Commonwealth Programme, a través de The Nuffield Foundation. Esta revisión se desarrolló durante las Reviews for Africa Programme organizadas por el South African Cochrane Centre, junio de 2006. Este documento es resultado de un proyecto financiado por Department for International Development (DFID) del RU para el beneficio de los países en desarrollo. Los criterios expresados no son necesariamente los de DFID.
Se agradece al profesor Martin Meremikwu por la orientación en el desarrollo del protocolo y la revisión, a miembros del personal del South African Cochrane Centre por la orientación en la preparación del protocolo y el desarrollo de la revisión, y al profesor Paul Garner y el Dr. Harriet MacLehose (editor coordinador del Grupo Cochrane de Enfermedades Infecciosas [CIDG] y editor adjunto, respectivamente) por la ayuda y la orientación en la preparación del protocolo y la redacción de la revisión.
| POTENCIAL CONFLICTO DE INTERÉS |
|
Ninguno conocido.
Characteristics of included studies [ordered by study ID]
|
ID
| Butler 1999
| | Methods | Generation of allocation sequence: table of random numbers
| | Participants | Allocation concealment: sealed envelopes
| | Interventions | Blinding: open
| | Outcomes | Inclusion of all randomized culture positive participants in final analysis: 77/92 (84%)
| | Notes | Number enrolled and randomized: 109
| |
| |
ID
| Chinh 2000
| | Methods | Generation of allocation sequence: computer-generated randomization list
| | Participants | Allocation concealment: serially numbered sealed envelopes
| | Interventions | Blinding: open
| | Outcomes | Inclusion of all randomized culture positive participants in the final analysis: 100%
| | Notes | Number enrolled and randomized: 97
| |
| |
ID
| Dolecek 2008
| | Methods | Generation of allocation sequence: computer-generated block randomization
| | Participants | Allocation concealment: sequentially numbered, folded opaque, sealed envelopes
| | Interventions | Blinding: open label
| | Outcomes | Inclusion of all randomized culture positive participants in the final analysis: > 90%
| | Notes | Number enrolled and randomized: 358
| |
| |
ID
| Frenck 2000
| | Methods | Generation of allocation sequence: block randomization using random-number list
| | Participants | Allocation concealment: sequentially numbered sealed envelopes
| | Interventions | Blinding: open label
| | Outcomes | Inclusion of all randomized culture positive participants in the final analysis: 100%
| | Notes | Number enrolled and randomized: 108
| |
| |
ID
| Frenck 2004
| | Methods | Generation of allocation sequence: block randomization using random-number generator
| | Participants | Allocation concealment: sequentially numbered sealed envelopes
| | Interventions | Blinding: open
| | Outcomes | Inclusion of all randomized participants in the final analysis: 100%
| | Notes | Number enrolled and randomized: 128
| |
| |
ID
| Girgis 1999
| | Methods | Generation of allocation sequence: block randomization based on a random-number list
| | Participants | Allocation concealment: sealed envelopes
| | Interventions | Blinding: participants and providers were blinded; blinding of outcome assessors unclear
| | Outcomes | Inclusion of all randomized culture positive participants in the final analysis: 100%
| | Notes | Number enrolled and randomized: 123
| |
| |
ID
| Parry 2007
| | Methods | Generation of allocation sequence: computer-generated randomization list
| | Participants | Allocation concealment: serially numbered sealed envelopes
| | Interventions | Inclusion of all randomized participants in final analysis: 100%
| | Outcomes | Number enrolled and randomized: 241
| | Notes | Number analysed (culture positive): 199
| |
|
|
MDR: multiple-drug resistant; NaR: nalidixic acid resistant.
Characteristics of excluded studies [ordered by study ID]
| Study | Reason for exclusion | | Chiu 1999 | Randomized controlled trial comparing azithromycin, cefixime, and no antibiotics in uncomplicated non-typhoid Salmonella enteritis | | Li 2005 | Included participants with complicated typhoid fever and used intravenous azithromycin | | Tribble 1995 | Non-comparative and non-randomized trial | | Wallace 1994 | Report of 4 cases in which all treated with azithromycin and switched to another drug when there was no improvement |
|
Characteristics of ongoing studies [ordered by study ID]
| Trial name or title | ISRCTN66534807
| | Methods | "A randomised clinical trial of Azithromycin versus Ofloxacin in the treatment of adults with uncomplicated typhoid fever at Mahosot Hospital, Vientiane, Lao People's Democratic Republic (PDR)"
| | Participants | Randomized controlled trial
| | Interventions | Inclusion criteria: adult (> 15 years) non-pregnant patients with suspected or blood culture proven typhoid; fever > 37.5 °C; informed written consent to the study; able to stay in hospital for 7 days; able to take oral medication; body weight > 40 kg; likely to be able to complete 6 months' follow up; none of the exclusion criteria
| | Outcomes | Exclusion criteria: known hypersensitivity to ofloxacin or azithromycin; administration of chloramphenicol, co-trimoxazole, ampicillin, azithromycin, or a fluoroquinolone during the previous week; pregnancy or breastfeeding; contradictions to ofloxacin or azithromycin; evidence for severe typhoid
| | Starting date | 1. Azithromycin: oral for 3 days 2. Ofloxacin: oral for 3 days
| | Contact information |
| |
|
|
Table 1 Detailed search strategies
| Search set | CIDG SRa | CENTRAL | MEDLINEb | EMBASEb | LILACSb | | 1 | azithromycin | azithromycin | azithromycin | azithromycin | azithromycin | | 2 | typhoid fever* | typhoid fever* | typhoid fever* | typhoid fever* | typhoid fever* | | 3 | paratyphoid fever* | paratyphoid fever* | paratyphoid fever* | paratyphoid fever$ | paratyphoid* | | 4 | salmonell* | enteric fever | enteric fever | enteric fever | salmonell* | | 5 | 2 or 3 or 4 | TYPHOID FEVER | TYPHOID FEVER | TYPHOID FEVER | 2 or 3 or 4 | | 6 | 1 and 5 | SALMONELL* | PARATYPHOID FEVER | salmonell$ | 1 and 5 | | 7 | — | 2 or 3 or 4 or 5 or 6 | salmonell* | 2 or 3 or 4 or 5 or 6 | — | | 8 | — | 1 and 7 | 2 or 3 or 4 or 5 or 6 or 7 | 1 and 7 | — | | 9 | — | — | 1 and 8 | Limit 8 to humans | — | | 10 | — | — | Limit 9 to humans | — | — |
|
Table 2 Definitions of outcome measures
| Comparison | Trial | Clinical failure | Microbiological failure | Relapse | Fever clearance time | | Azithromycin vs chloramphenicol | Butler 1999 | Lack of improvement or worsening of signs and symptoms or need to change antibiotic therapy | Not defined | Clinical: return of fever after day 14 Bacteriological recurrence: blood culture positive for S. Typhi or S. Paratyphi on day 21 or 35 days after start of therapy | Not defined | | Azithromycin vs fluoroquinolones | Girgis 1999 | Lack of resolution of symptoms by day 7 or development of a major complication of typhoid fever after 5 days of therapy | Blood culture positive for S. Typhi or S. Paratyphi on day 4 or 10 | Recurrence of fever with signs and symptoms of typhoid fever within 4 weeks of therapy completion along with isolation of organism in culture | First day on which maximum temperature < 38.0 °C with maintenance of temperature at this level for at least 48 hours | | Chinh 2000 | Persistence of fever and symptoms for > 5 days after end of treatment or development of severe complications during treatment, requiring a change in therapy | Isolation of S. Typhi or serovar S. Paratyphi A from blood or a sterile site after completion of treatment | Recurrence of symptoms and signs suggestive of enteric fever after the participant had been discharged as well from the hospital | Time from start of treatment until the body temperature fell < 37.5 °C and remained at < 37.5 °C for 48 hours | | Parry 2007 | Persistence of fever and at least 1 other typhoid related symptom for > 7 days after start of treatment, or development of complications during treatment requiring change in therapy | Isolation of S. Typhi or Paratyphi from blood or sterile site after completion of treatment | Recurrence of symptoms and signs suggestive of enteric fever within the 4-week period after participant discharged from hospital plus blood culture positive for S. Typhi or S. Paratyphi | Time from start of treatment until body temperature 37.5 °C and remained so for 48 hours | | Dolecek 2008 | Persistence of fever and symptoms 2 days after end of treatment, ie on day 10 or need for re-treatment due to insufficient treatment response as judged by the treating physician | Positive blood culture on day 7 to 9 after start of treatment | Occurrence of symptoms and signs of typhoid fever within 1 month after completion of treatment | Time from the start of the antibiotic treatment to when the axillary temperature first fell = 37.5 ºC and remained there for at least 48 hours | | Azithromycin vs ceftriaxone | Frenck 2000 | Persistence of > 1 typhoid-related symptom or sign present at study entry, or development of a typhoid-related complication after at least 4 days of therapy | Not defined | Recurrence of fever with symptoms of typhoid fever within 4 weeks of completion of therapy along with isolation of S. Typhi or S. Paratyphi from blood | Not defined | | Frenck 2004 | Persistence of > 2 typhoid-related symptoms or signs present at study entry or as development of a typhoid-related complication | Blood culture positive for S. Typhi on day 8 | Recurrence of fever and clinical features of typhoid within 30 days of completing therapy, along with isolation of S. Typhi from the blood | Not defined |
|
Table 3 Participants with MDR and NaR strains
| Comparison | Trial | Participants | Culture positive (site) | S. Typhi/Paratyphi | Number (%) with MDR | Number (%) with NaR | Notes | | Azithromycin vs chloramphenicol | Butler 1999 | 109 enrolled and randomized | 92 (blood) | 82/10 azithromycin | 38/4 chloramphenicol | 29/6 15 participants excluded for various reasons | 10 (11%) | Not stated | — | | Azithromycin vs fluoroquinolone | Chinh 2000 | 97 enrolled and randomized | 88 (blood) | 86/2 not stated | 68 (77.2%) | Azithromycin: 33 | Fluoroquinolone 35 | 46 (52%) | Azithromycin: 25 | Fluoroquinolon: 21 | 1 isolate was not available for sensitivity testing | | Girgis 1999 | 123 enrolled and randomized | 52 (blood); 2 (stool); 10 (both blood and stool) | 34/2 azithromycin | 26/2 ciprofloxacin | 21 (33%) | Azithromycin: 6 | Fluoroquinolone: 15 | Not stated | — | | Parry 2007 | 241 enrolled and randomized | 199 (blood or bone marrow) | 198/1 | 62/0 azithromycin | 63/0 ofloxacin | 62/1 ofloxacin-azithromycin | 165 (83%) | Azithromycin: 53 | Fluoroquinolone: 57 | 172 (86%) | Azithromycin 55 (89%) | Fluoroquinolone 62 (98%) | This study had 3 arms | | Dolecek 2008 | 358 enrolled and randomized | 288 (blood or bone marrow) | 144/1 gatifloxacin | 138/4 azithromycin | 153 (58%) | Gatifloxacin: 87 (63.5%) | Azithromycin: 66 (52.3%) | 254 (96.5%) | Gatifloxacin:132 (96.3%) | Azithromycin:121 | (96%) | Only 263 isolates had antibiotic susceptibility testing | | Azithromycin vs ceftriaxone | Frenck 2000 | 108 enrolled and randomized | 64 (blood) | 64/0 | 11 (17.2%) | Not stated | — | | Frenck 2004 | 128 enrolled and randomized | 65 (blood); 13 (stool) | 64/0 | 1 (1.5%) | Not stated | — |
|
Table 2 Definitions of outcome measures
| Comparison | Trial | Clinical failure | Microbiological failure | Relapse | Fever clearance time | | Azithromycin vs chloramphenicol | Butler 1999 | Lack of improvement or worsening of signs and symptoms or need to change antibiotic therapy | Not defined | Clinical: return of fever after day 14 Bacteriological recurrence: blood culture positive for S. Typhi or S. Paratyphi on day 21 or 35 days after start of therapy | Not defined | | Azithromycin vs fluoroquinolones | Girgis 1999 | Lack of resolution of symptoms by day 7 or development of a major complication of typhoid fever after 5 days of therapy | Blood culture positive for S. Typhi or S. Paratyphi on day 4 or 10 | Recurrence of fever with signs and symptoms of typhoid fever within 4 weeks of therapy completion along with isolation of organism in culture | First day on which maximum temperature < 38.0 °C with maintenance of temperature at this level for at least 48 hours | | Chinh 2000 | Persistence of fever and symptoms for > 5 days after end of treatment or development of severe complications during treatment, requiring a change in therapy | Isolation of S. Typhi or serovar S. Paratyphi A from blood or a sterile site after completion of treatment | Recurrence of symptoms and signs suggestive of enteric fever after the participant had been discharged as well from the hospital | Time from start of treatment until the body temperature fell < 37.5 °C and remained at < 37.5 °C for 48 hours | | Parry 2007 | Persistence of fever and at least 1 other typhoid related symptom for > 7 days after start of treatment, or development of complications during treatment requiring change in therapy | Isolation of S. Typhi or Paratyphi from blood or sterile site after completion of treatment | Recurrence of symptoms and signs suggestive of enteric fever within the 4-week period after participant discharged from hospital plus blood culture positive for S. Typhi or S. Paratyphi | Time from start of treatment until body temperature 37.5 °C and remained so for 48 hours | | Dolecek 2008 | Persistence of fever and symptoms 2 days after end of treatment, ie on day 10 or need for re-treatment due to insufficient treatment response as judged by the treating physician | Positive blood culture on day 7 to 9 after start of treatment | Occurrence of symptoms and signs of typhoid fever within 1 month after completion of treatment | Time from the start of the antibiotic treatment to when the axillary temperature first fell = 37.5 ºC and remained there for at least 48 hours | | Azithromycin vs ceftriaxone | Frenck 2000 | Persistence of > 1 typhoid-related symptom or sign present at study entry, or development of a typhoid-related complication after at least 4 days of therapy | Not defined | Recurrence of fever with symptoms of typhoid fever within 4 weeks of completion of therapy along with isolation of S. Typhi or S. Paratyphi from blood | Not defined | | Frenck 2004 | Persistence of > 2 typhoid-related symptoms or signs present at study entry or as development of a typhoid-related complication | Blood culture positive for S. Typhi on day 8 | Recurrence of fever and clinical features of typhoid within 30 days of completing therapy, along with isolation of S. Typhi from the blood | Not defined |
|
Table 3 Participants with MDR and NaR strains
| Comparison | Trial | Participants | Culture positive (site) | S. Typhi/Paratyphi | Number (%) with MDR | Number (%) with NaR | Notes | | Azithromycin vs chloramphenicol | Butler 1999 | 109 enrolled and randomized | 92 (blood) | 82/10 azithromycin | 38/4 chloramphenicol | 29/6 15 participants excluded for various reasons | 10 (11%) | Not stated | — | | Azithromycin vs fluoroquinolone | Chinh 2000 | 97 enrolled and randomized | 88 (blood) | 86/2 not stated | 68 (77.2%) | Azithromycin: 33 | Fluoroquinolone 35 | 46 (52%) | Azithromycin: 25 | Fluoroquinolon: 21 | 1 isolate was not available for sensitivity testing | | Girgis 1999 | 123 enrolled and randomized | 52 (blood); 2 (stool); 10 (both blood and stool) | 34/2 azithromycin | 26/2 ciprofloxacin | 21 (33%) | Azithromycin: 6 | Fluoroquinolone: 15 | Not stated | — | | Parry 2007 | 241 enrolled and randomized | 199 (blood or bone marrow) | 198/1 | 62/0 azithromycin | 63/0 ofloxacin | 62/1 ofloxacin-azithromycin | 165 (83%) | Azithromycin: 53 | Fluoroquinolone: 57 | 172 (86%) | Azithromycin 55 (89%) | Fluoroquinolone 62 (98%) | This study had 3 arms | | Dolecek 2008 | 358 enrolled and randomized | 288 (blood or bone marrow) | 144/1 gatifloxacin | 138/4 azithromycin | 153 (58%) | Gatifloxacin: 87 (63.5%) | Azithromycin: 66 (52.3%) | 254 (96.5%) | Gatifloxacin:132 (96.3%) | Azithromycin:121 | (96%) | Only 263 isolates had antibiotic susceptibility testing | | Azithromycin vs ceftriaxone | Frenck 2000 | 108 enrolled and randomized | 64 (blood) | 64/0 | 11 (17.2%) | Not stated | — | | Frenck 2004 | 128 enrolled and randomized | 65 (blood); 13 (stool) | 64/0 | 1 (1.5%) | Not stated | — |
|
Table 4 Risk of bias assessment
| Comparison | Trial | Allocation sequence generation | Allocation concealment | Blinding | Randomized participants in the analysis | | Azithromycin vs chloramphenicol | Butler 1999 | Adequate | Adequate | Open | Inadequate | | Azithromycin vs ofloxacin | Chinh 2000 | Adequate | Adequate | Open | Adequate | | Azithromycin vs gatifloxacin | Dolecek 2008 | Adequate | Adequate | Open | Adequate | | Azithromycin vs ciprofloxacin | Girgis 1999 | Adequate | Adequate | Open | Adequate | | Azithromycin vs ofloxacin | Parry 2007 | Adequate | Adequate | Open | Adequate | | Azithromycin vs ceftriaxone | Frenck 2000 | Adequate | Adequate | Open | Adequate | | Azithromycin vs ceftriaxone | Frenck 2004 | Adequate | Adequate | Open | Adequate |
|
Table 5 Serious adverse events
Table 6 Other adverse events
| Comparison | Trial | Clinical adverse eventsa | Laboratory adverse eventsa | | Intervention | Control | Intervention | Control | | Azithromycin vs chloramphenicol | Butler 1999 | Azithromycin: 5 gastrointestinal (2) others not stated | None | Not described | Not described | | Azithromycin vs fluoroquinolone | Chinh 2000 | Azithromycin: | Gastrointestinal bleeding (1); nausea (5); vomiting (5); abdominal pain (4); skin rash (1) | Ofloxacin | Gastrointestinal bleeding; nausea (1); vomiting (3); abdominal pain (4); skin rash (0) | Azithromycin: mild elevation in mean transaminase levels | Ofloxacin: mild elevation in mean transaminase levels | | Girgis 1999 | Azithromycin: nausea or vomiting (6); lightheadedness (2); dry throat or mouth (3); loose stools (3); constipation (2) | Ciprofloxacin: nausea or vomiting (4); lightheadedness (2); dry throat or mouth (4); loose stools (3); constipation (2) | Azithromycin: thrombocytosis (4); mild increase in aspartate amino transaminase levels (2) | Ciprofloxacin: thrombocytosis (1); mild increases in aspartate transaminases levels (3) | | Parry 2007 | Azithromycin: joint discomfort (1) | Ofloxacin: joint discomfort | Azithromycin: none | Ofloxacin: none | | Dolecek 2008 | Azithromycin: | Gastrointestinal bleeding (4) | Liver dysfunction (2) | Maculopapular rash (1) | Pneumonia (2) | Gatifloxacin: vomiting (1); diarrhoea (1) | Azithromycin: mild elevations in median transaminase levels | Gatifloxacin: mild elevations in median transaminase levels | | Azithromycin vs ceftriaxone | Frenck 2000 | Azithromycin: gastrointestinal symptoms most commonly vomiting | Ceftriaxone: gastrointestinal symptom less; pains at injection site (6) | Azithromycin: mild elevation in alanine aminotransferase (1) and aspartate transaminases (2); thrombocytosis (4) | Ceftriaxone: mild elevations in alanine transaminase (1) and aspartate transaminase (4), thrombocytosis (3) | | Frenck 2004 | Azithromycin: vomiting (11); diarrhoea (10); nausea (5); abdominal pain (3); anorexia (3); cough (3) | Ceftriaxone: vomiting (7); diarrhoea (15); nausea (7); abdominal pain (5); anorexia (6); cough (2) | Azithromycin: mild increases in aspartate transaminase levels (2) and alanine transaminase levels (2); thrombocytosis (7) | Ceftriaxone: mild increases in aspartate transaminase levels (2) and alanine transaminase levels (5); thrombocytosis (7) |
|
Referencias de los estudios incluidos en esta revisión
Butler 1999{Solo datos publicados}
Butler T, Sridhar CB, Daga MK, Pathak K, Pandit RB, Khakhria R, et al. Treatment of typhoid fever with azithromycin versus chloramphenicol in a randomized multicentre trial in India. Journal of Antimicrobial Chemotherapy 1999;44(2):243-50.
Chinh 2000{Datos publicados y no publicados}
Chinh NT, Parry CM, Ly NT, Ha HD, Thong MX, Diep TS, et al. A randomized controlled comparison of azithromycin and ofloxacin for treatment of multidrug-resistant or nalidixic acid-resistant enteric fever. Antimicrobial Agents and Chemotherapy 2000;44(7):1855-9.
Dolecek 2008{Solo datos publicados}
Dolecek C, La TTP, Rang NN, Phuong LT, Tuan PQ, DU DC, et al. A multi-center randomised controlled trial of gatifloxacin versus azithromycin for the treatment of uncomplicated typhoid and paratyphoid fever in children and adults in Vietnam. PLoS ONE 2008;3(5):e2188.
Frenck 2000{Solo datos publicados}
Frenck RW Jr, Nakhla I, Sultan Y, Bassily SB, Girgis YF, David J, et al. Azithromycin versus ceftriaxone for the treatment of uncomplicated typhoid fever in children. Clinical Infectious Diseases 2000;31(5):1134-8.
Frenck 2004{Solo datos publicados}
Frenck RW Jr, Mansour A, Nakhla I, Sultan Y, Putnam S, Wierzba T, et al. Short-course azithromycin for the treatment of uncomplicated typhoid fever in children and adolescents. Clinical Infectious Diseases 2004;38(7):951-7.
Girgis 1999{Solo datos publicados}
Girgis NI, Butler T, Frenck RW, Sultan Y, Brown FM, Tribble D, et al. Azithromycin versus ciprofloxacin for treatment of uncomplicated typhoid fever in a randomized trial in Egypt that included patients with multidrug resistance. Antimicrobial Agents And Chemotherapy 1999;43(6):1441-4.
Parry 2007{Solo datos publicados}
Parry CM, Ho VA, Phuong le T, Bay PV, Lanh MN, Tung le T, et al. Randomized controlled comparison of ofloxacin, azithromycin, and an ofloxacin-azithromycin combination for treatment of multidrug-resistant and nalidixic acid-resistant typhoid fever. Antimicrobial Agents Chemotherapy 2007;51(3):819-25.
Referencias de los estudios excluidos de esta revisión
Chiu 1999{Solo datos publicados}
Chiu CH, Lin TY, Ou JT. A clinical trial comparing oral azithromycin, cefixime and no antibiotics in the treatment of acute uncomplicated salmonella enteritis in children. Journal of Paediatric Child Health 1999;35(4):372-4.
Li 2005{Solo datos publicados}
Li D. Therapeutic effect of azithromycin in children with typhoid. Chinese Journal of Contemporary Pediatrics 2005;7(1):57-8.
Tribble 1995{Solo datos publicados}
Tribble D, Girgis N, Habib N, Butler T. Efficacy of azithromycin for typhoid fever. Clinical Infectious Diseases 1995;21(4):1045-6.
Wallace 1994{Solo datos publicados}
Wallace MR, Yousif AA, Habib NF, Tribble DR. Azithromycin and typhoid. The Lancet 1994;343(8911):1497-8.
Referencias de los estudios en marcha
ISRCTN66534807{Solo datos publicados}
ISRCTN66534807. A randomised clinical trial of azithromycin versus ofloxacin in the treatment of adults with uncomplicated fever at Mahosot Hospital, Vientiane, Lao PDR. www.controlled-trials.com/ISRCTN66534807. (accessed 23 May 2006).
Referencias adicionales
Aarestrup 2003Aarestrup FM, Wiuff C, Molbak K, Threlfall EJ. Is it time to change fluoroquinolone breakpoints for Salmonella spp.?. Antimicrobial Agents Chemotherapy 2003;47(2):827-9.
Ackers 2000Ackers ML, Puhr ND, Tauxe RV, Mintz ED. Laboratory-based surveillance of Salmonella serotype Typhi infections in the United States: antimicrobial resistance on the rise. JAMA 2000;283(20):2668-73.
Adams 1987Adams EB. Typhoid and paratyphoid fevers. In: Weatherall DJ, Ledingham JG, Warrell DA, editor(s). Oxford Textbook of Medicine. 2nd Edition. Oxford: Oxford University Press, 1987:183-5.
Akinyemi 2005Akinyemi KO, Smith SI, Oyefolu AOB, Coker AO. Multidrug resistance in Salmonella enterica serovar typhi isolated from patients with typhoid fever complications in Lagos, Nigeria. Public Health 2005;119(4):321-7.
Akoh 1991Akoh J. Relative sensitivity of blood and bone marrow cultures in typhoid fever. Tropical Doctor 1991;21(4):174-6.
Asna 2003Asna SM, Haq JA, Rahman MM. Nalidixic acid-resistant Salmonella enterica serovar Typhi with decreased susceptibility to ciprofloxacin caused treatment failure: a report from Bangladesh. Japanese Journal of Infectious Diseases 2003;56(1):32-3.
Bhan 2005Bhan MK, Bahl R, Bhatnagar S. Typhoid and paratyphoid fever. Lancet 2005;366(9487):749-62.
Bhutta 1996Bhutta ZA. Impact of age and drug resistance on mortality in typhoid fever. Archives of Diseases in Childhood 1996;75(3):214-7.
Bhutta 2000Bhutta ZA, Khan IA, Shadmani M. Failure of short-course ceftriaxone chemotherapy for multidrug-resistant typhoid fever in children: a randomized controlled trial in Pakistan. Antimicrobial Agents and Chemotherapy 2000;44(2):450-2.
Burkhardt 1990Burkhardt JE, Hill MA, Carlton WW, Kesterson JW. Histologic and histochemical changes in articular cartilages of immature beagle dogs dosed with difloxacin, a fluoroquinolone. Veterinary Pathology 1990;27(3):162-70.
Butler 1991Butler T, Islam A, Kabir I, Jones PK. Patterns of morbidity and mortality in typhoid fever dependent on age and gender: a review of 552 hospitalized patients with diarrhea. Review of Infectious Diseases 1991;13(1):85-90.
Butler 2001Butler T, Frenck RW, Johnson RB, Khakhria R. In vitro effects of azithromycin on Salmonella typhi: early inhibition by concentrations less than the MIC and reduction of MIC by alkaline pH and small inocula. Journal of Antimicrobial Chemotherapy 2001;47(4):455-8.
Butt 2003Butt T, Ahmad RN, Mahmood A, Zaidi S. Ciprofloxacin treatment failure in typhoid fever case, Pakistan. Emerging Infectious Diseases 2003;9(12):1621-2.
Carbon 1998Carbon C. Pharmacodynamics of macrolides, azalides, and streptogramins: effect on extracellular pathogens. Clinical Infectious Diseases 1998;27(1):28-32.
Chambers 2004Chambers HF. Chloramphenicol, tetracyclines, macrolides, clindamycin, and streptogramins. In: Katzung BG, editor(s). Basic and Clinical Pharmacology. 9th Edition. Boston: McGraw Hill, 2004:754-63.
Coovadia 1992Coovadia YM, Gathiram V, Bhamjee A, Garratt RM, Mlisana K, Pillay N, et al. An outbreak of multiresistant Salmonella typhi in South Africa. Quarterly Journal of Medicine 1992;82(298):91-100.
Corales 2000Corales R. Typhoid fever. www.Emedicine.com/med/topic2331/.html. (accessed 20 August 2004).
Crump 2003Crump JA, Barrett TJ, Nelson JT, Angulo FJ. Reevaluating fluoroquinolone breakpoints for Salmonella enterica serotype Typhi and for non-Typhi salmonellae. Clinical Infectious Diseases 2003;37(1):75-81.
Crump 2004Crump JA, Luby SP, Mintz ED. The global burden of typhoid fever. Bulletin of the World Health Organization 2004;82(5):346-53.
Doherty 2000Doherty CP, Saha Sk, Cutting WA. Typhoid fever, ciprofloxacin and growth in young children. Annals of Tropical Paediatrics 2000;20(4):297-303.
Dutta 2001Dutta TK, Beeresha, Ghotekar LH. Atypical manifestations of typhoid fever. Journal of Postgraduate Medicine 2001;47(4):248-51.
Ferreccio 1984Ferreccio C, Levine MM, Manterola A, Rodriguez G, Rivara I, Prenzel I, et al. Benign bacteremia caused by Salmonella typhi and paratyphi in children younger than two years. Journal of Pediatrics 1984;104(6):899-901.
Gasem 1995Gasem MH, Dolmans WM, Isbandrio BB, Wahyono H, Keuter M, Djokomoeljanto R. Culture of Salmonella typhi and Salmonella paratyphi from blood and bone marrow in the suspected typhoid fever. Tropical and Geographical Medicine 1995;47(4):164-7.
Gogia 2006Gogia A, Agarwal PK, Khosla P, Jain S, Jain KP. Quinolone-resistant typhoid fever. Indian Journal Medical Sciences 2006;60(9):389-90.
Hopkins 2005Hopkins RS, Jajosky RA, Hall PA, Adams DA, Connor FJ, Sharp P, et al. Summary of notifiable diseases--United States, 2003. MMWR 2005;52(54):1-85.
House 2001House D, Wain J, Ho VA, Diep TS, Chinh NT, Bay PV, et al. Serology of typhoid fever in an area of endemicity and it's relevance to diagnosis. Journal of Clinical Microbiology 2001;39(3):1002-7.
Joshi 2007Joshi S, Amarnath SK. Fluoroquinolone resistance in Salmonella typhi and S. paratyphi A in Bangalore, India. Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene 2007;101(3):308-10.
Jüni 2001Jüni P, Altman DG, Egger M. Systematic reviews in healthcare: Assessing the quality of controlled clinical trials. BMJ 2001;323(7303):42-6.
Kariuki 2004Kariuki S, Revathi G, Muyodi J, Mwituria J, Munyalo A, Mirza S, et al. Characterization of multidrug-resistant typhoid outbreaks in Kenya. Journal of Clinical Microbiology 2004;42(4):1477-82.
Kownhar 2007Kownhar H, Shankar EM, Rajan R, Rao UA. Emergence of nalidixic acid-resistant Salmonella enterica serovar Typhi resistant to ciprofloxacin in India. Journal of Medical Microbiology 2007;56(1):136-7.
Lakshmi 2006Lakshmi V, Ashok R, Susmita J, Shailaja VV. Changing trends in the antibiograms of Salmonella isolates at a tertiary care hospital in Hyderabad. Indian Journal of Medical Microbiology 2006;24(1):45-8.
Lang 1992Lang R, Maayan MC, Lidor C, Savin H, Kolman S, Lishner M. Salmonella paratyphi C osteomyelitis: report of two separate episodes 17 years apart. Scandinavian Journal of Infectious Diseases 1992;24(6):793-6.
Le 2004Le TA, Lejay-Collin M, Grimont PAD, Hoang TL, Nguyen TV, Grimont F, et al. Endemic, epidemic clone of Salmonella enterica serovar typhi harboring a single multidrug-resistant plasmid in Vietnam between 1995 and 2002. Journal of Clinical Microbiology 2004;42(7):3094-9.
Lefebvre 2008Lefebvre C, Manheimer E, Glanville J. Chapter 6: Searching for studies. In: Higgins JPT, Green S (editors). Cochrane Handbook for Systematic Reviews of Interventions Version 5.0.0 (updated February 2008). The Cochrane Collaboration, 2008. Available from www.cochrane-handbook.org. .
Lesser 2001Lesser CF, Miller SI. Salmonellosis. In: Braunwald E, Fauci AS, Kasper DL, Hauser SL, Longo DL, Jameson JL, editor(s). Harrison's Principles of Internal Medicine. Vol. 1, 15th Edition. New York: McGraw-Hill, 2001:971-3.
Lin 2002Lin FY, Vo AH, Phan VB, Nguyen TT, Bryla D, Tran CT, et al. The epidemiology of typhoid fever in the Dong Thap province, Mekong Delta region of Vietnam. American Journal of Tropical Medicine and Hygiene 2000;62(5):644-8.
Madhulika 2004Madhulika U, Harish BN, Parija SC. Current pattern in antimicrobial susceptibility of Salmonella Typhi isolates in Pondicherry. Indian Journal of Medical Research 2004;120(2):111-4.
Maskalyk 2003Maskalyk J. Typhoid fever. Canadian Medical Association Journal 2003;169(2):132.
Mermin 1999Mermin JH, Villar R, Carpenter J, Roberts L, Samaridden A, Gasanova L, et al. A massive epidemic of multidrug-resistant typhoid fever in Tajikistan associated with consumption of municipal water. Journal of Infectious Diseases 1999;179(6):1416-22.
Metchock 1990Metchock B. In-vitro activity of azithromycin compared with other macrolides and oral antibiotics against Salmonella typhi. Journal of Antimicrobial Chemotherapy 1990;25 Suppl A:29-31.
Mirza 1996Mirza SH, Beeching NJ, Hart CA. Multi-drug resistant typhoid: a global problem. Journal of Medical Microbiology 1996;44(5):317-9.
Murdoch 1998Murdoch DA, Banatvaia N, Bone A, Shoismatulloev BI, Ward LR, Threlfall EJ. Epidemic ciprofloxacin-resistant Salmonella typhi in Tajikistan. Lancet 1998;351(9099):339.
Mushtaq 2006Mushtaq MA. What after ciprofloxacin and ceftriaxone in the treatment of Salmonella Typhi?. Pakistan Journal of Medical Sciences 2006;22(1):51-4.
Parry 1984Parry EHO. Typhoid fever. In: Parry EHO, editor(s). Principles of Medicine in Africa. 2nd Edition. Oxford: Oxford University Press, 1984:268-76.
Parry 2002Parry CM, Hien TT, Dougan G, White NJ, Farrar JJ. Typhoid fever. New England Journal of Medicine 2002;347(22):1770-82.
Parry 2004Parry CM. The Treatment of multidrug-resistant and nalidixic acid-resistant typhoid fever in Viet Nam. Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene 2004;98(7):413-22.
Parry 2006Parry CM, Karunanayake L, Coulter JBS, Beeching NJ. Test for quinolone resistance in typhoid fever. BMJ 2006;333(7561):260-1.
Rajagopal 2002Rajagopal A, Ramasamy R, Mahendran G, Thomas M. Hepatic abscess complicating paratyphoid infection. Tropical Gastroenterology 2002;23(4):181-2.
Renuka 2005Renuka K, Sood S, Das BK, Kapil A. High-level ciprofloxacin resistance in Salmonella enterica serotype typhi in India. Journal of Medical Microbiology 2005;54 pt 10:999-1000.
Review Manager 5The Nordic Cochrane Centre, The Cochrane Collaboration. Review Manager (RevMan). 5.0. Copenhagen: The Nordic Cochrane Centre, The Cochrane Collaboration. 2008.
Ribot 2002Ribot EM, Wierzba RK, Angulo FJ, Barrett TJ. Salmonella enterica serotype Typhimurium DT104 isolated from humans, United States 1985, 1990, and 1995. Emerging Infectious Diseases 2002;8(4):387-91.
Rowe 1997Rowe B, Ward LR, Threlfall EJ. Multidrug-resistant Salmonella typhi: a worldwide epidemic. Clinical Infectious Diseases 1997;24 Suppl 1:106-9.
Rupali 2004Rupali P, Abraham OC, Jesudason MV, John TJ, Zachariah A, Sivaram S, et al. Treatment failure in typhoid fever with ciprofloxacin susceptible Salmonella enterica Serotype Typhi. Diagnostic Micribiology and Infectious Disease 2004;49(1):1-3.
Schaad 1995Schaad UB, abdus Salam M, Aujard Y, Dagan R, Green SD, Peltola H, et al. Use of fluoroquinolones in pediatrics: consensus report of an International Society of Chemotherapy commission. Pediatric Infectious Disease Journal 1995;14(1):1-9.
Sinha 1999Sinha A, Sazawal AK, Kumar R, Sood S, Reddaiah VP, Singh B, et al. Typhoid fever in children aged less than 5 years. Lancet 1999;354(9180):734-7.
Smith 1994Smith MD, Duong NM, Hoa NT, Wain J, Ha HD, Diep TS, et al. Comparison of ofloxacin and ceftriaxone for short course treatment of enteric fever. Antimicrobial Agents Chemotherapy 1994;38(8):1716-20.
Sood 1999Sood S, Kapil A, Das B, Jain Y, Kabra SK. Re-emergence of chloramphenicol-sensitive Salmonella typhi. Lancet 1999;353(9160):1241-2.
Stahlmann 2000Stahlmann R, Kühner S, Shakibaei M, Schwabe R, Flores J, Evander SA. Chondrotoxicity of ciprofloxacin in immature beagle dogs: immunohistochemistry, electron microscopy and drug plasma levels. Archives of Toxicology 2000;73(10-11):564-72.
Thaver 2008Thaver D, Zaidi AKM, Critchley JA, Azmatullah A, Madni SA, Bhutta ZA. Fluoroquinolones for treating typhoid and paratyphoid fever (enteric fever) [DOI: ]. In: Cochrane Database of Systematic Reviews, 4, 2008. 10.1002/14651858.CD004530.pub2.
Threlfall 1999Threlfall EJ, Ward LR, Skinner JA, Smith HR, Lacey S. Ciprofloxacin-resistant Salmonella typhi and treatment failure. Lancet 1999;353(9164):1590-1.
Threlfall 2001Threlfall EJ, Ward LR. Decreased susceptibility to ciprofloxacin in Salmonella enterica serotype typhi, United Kingdom. Emerging Infectious Diseases 2001;7(3):448-50.
Vallenas 1985Vallenas C, Hernandez H, Kay B, Black R, Gotuzzo E. Efficacy of bone marrow, blood, stool and duodenal contents for bacteriologic confirmation of typhoid fever in children. Pediatric Infectious Disease 1985;4(5):496-8.
Wain 1997Wain J, Hoa NT, Chinh NT, Vinh H, Everett MJ, Diep TS, et al. Quinolone-resistant Salmonella typhi in Viet Nam: molecular basis of resistance and clinical response to treatment. Clinical Infectious Diseases 1997;25(6):1404-10.
Wasfy 2002Wasfy MO, Frenck R, Ismail TF, Mansour H, Malone JL, Mahoney FJ. Trends of multiple-drug resistance among Salmonella serotype Typhi isolates during a 14-year period in Egypt. Clincal Infectious Diseases 2002;35:1265-8.
Para visualizar un gráfico o una tabla, haga clic en la medida de resultado que aparece en la tabla de abajo.Para visualizar los gráficos mediante el Metaview, haga clic en "Visualizar Metaview" en el encabezado del gráfico.| 01 Azithromycin (AZM) vs chloramphenicol (CM) |
|---|
| Medida de resultado | No. of studies | No. of participants | Statistical method | Effect size | | 1 Clinical failure |
|
| Odds Ratio (M-H, Fixed, 95% CI) | Totals not selected | | 2 Microbiological failure |
|
| Odds Ratio (M-H, Fixed, 95% CI) | Totals not selected | | 3 Fever clearance time (hours) |
|
| Mean Difference (IV, Fixed, 95% CI) | Totals not selected | | 4 Adverse events (excluding serious adverse events) |
|
| Odds Ratio (M-H, Fixed, 95% CI) | Totals not selected | | 02 Azithromycin (AZM) vs fluoroquinolones (FQ) |
|---|
| Medida de resultado | No. of studies | No. of participants | Statistical method | Effect size | | 1 Clinical failure | 4 | 564 | Odds Ratio (M-H, Fixed, 95% CI) | 0.48 [0.26, 0.89] | | 2 Microbiological failure | 4 | 564 | Odds Ratio (M-H, Fixed, 95% CI) | 1.01 [0.32, 3.19] | | 3 Relapse | 4 | 491 | Odds Ratio (M-H, Fixed, 95% CI) | 0.13 [0.01, 1.08] | | 4 Fever clearance time (hours) | 4 | 564 | Mean Difference (IV, Random, 95% CI) | -9.80 [-34.15, 14.56] | | 5 Duration of hospital stay (days) | 2 | 213 | Mean Difference (IV, Fixed, 95% CI) | -1.04 [-1.73, -0.34] | | 6 Serious adverse events |
|
| Odds Ratio (M-H, Fixed, 95% CI) | Totals not selected | | 03 Azithromycin (AZM) vs ceftriaxone (CRO) |
|---|
| Medida de resultado | No. of studies | No. of participants | Statistical method | Effect size | | 1 Clinical failure | 2 | 132 | Odds Ratio (M-H, Fixed, 95% CI) | 2.58 [0.48, 13.87] | | 2 Microbiological failure | 2 | 132 | Odds Ratio (M-H, Fixed, 95% CI) | 0.58 [0.07, 4.62] | | 3 Relapse | 2 | 132 | Odds Ratio (M-H, Fixed, 95% CI) | 0.09 [0.01, 0.70] | | 4 Fever clearance time (hours) | 2 | 132 | Mean Difference (IV, Fixed, 95% CI) | 9.12 [-1.11, 19.36] |
|
| Titulo | Azitromicina para el tratamiento de la fiebre tifoidea y paratifoidea (fiebre entérica) no complicada | | Autor(es) | Effa Emmanuel E, Bukirwa Hasifa | | Contribución de los autores |
Emmanuel Effa redactó el protocolo, ayudó a realizar las búsquedas bibliográficas, extrajo los datos y redactó la revisión. Hasifa Bukirwa extrajo los datos y proporcionó orientación, apoyo editorial y tutoría. | | Número de protocolo publicado inicialmente | 2006/3 | | Número de revisión publicada inicialmente | 2008/4 | | Fecha de la modificación más reciente | La información no está disponible | | Fecha de la modificación SIGNIFICATIVA más reciente | 11 agosto 2008 | | Cambios más recientes | El autor no facilitó la información | | Fecha de búsqueda de nuevos estudios no localizados | El autor no facilitó la información | | Fecha de localización de nuevos estudios aún no incluidos/excluidos | El autor no facilitó la información | | Fecha de localización de nuevos estudios incluidos/excluidos | El autor no facilitó la información | | Fecha de modificación de la sección conclusiones de los autores | El autor no facilitó la información | | Dirección de contacto | Emmanuel E Effa Internal Medicine University of Calabar Teaching Hospital PMB 1278
Calabar Cross River State Nigeria | | Número de la Cochrane Library | CD006083 | | Grupo editorial | Cochrane Infectious Diseases Group | | Código del grupo editorial | HM-INFECTN |
|
Recursos externos
- Reviews for Africa Programme Fellowship, South Africa.
- Department for International Development (DFID), UK.
Recursos internos
- University of Calabar Teaching Hospital, Nigeria.
- Effective Health Care Alliance Programme (EHCAP), Nigeria.
Traducción realizada por el Centro Cochrane Iberoamericano.
Usado con permiso de John Wiley & Sons, Ltd.